色谱  2019, Vol. 37 Issue (3): 293-298   PDF    
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彭胜
李奂
施树云
绿原酸亲水性磁性分子印迹树脂的合成及其固相萃取性能评价
彭胜1,2, 李奂3, 施树云1,2,3     
1. 吉首大学林产化工工程湖南省重点实验室, 湖南 张家界 427000;
2. 吉首大学杜仲综合利用技术国家地方联合工程实验室, 湖南 吉首 416000;
3. 中南大学化学化工学院, 湖南 长沙 410083
摘要:以绿原酸(CGA)为模板分子、间苯二酚和三聚氰胺为双功能单体、甲醛为交联剂在磁性介孔二氧化硅(Fe3O4@mSiO2)的介孔中一步聚合形成亲水性磁性分子印迹树脂(MMIRs)。除去mSiO2载体后,MMIRs具有多孔结构且印迹位点位于材料表面。透射电镜、傅里叶变换红外光谱、振动样品磁强计、热重分析和水接触角实验表明:分子印迹聚合物层成功地包覆在Fe3O4表面,MMIRs具有良好的亲水性和磁固相萃取性能。MMIRs对CGA具有较强的吸附容量(50.87 mg/g)、较快的吸附速率(吸附平衡时间70 min)和较好的特异性吸附性能。将MMIRs用于杜仲黑茶中CGA的选择性分离,采用高效液相色谱分析检测,检出限为0.7 mg/L,回收率为93.1%~109.4%,相对标准偏差(RSD)小于9.6%。结果表明MMIRs可简单、快速、高选择性地分离富集复杂水体系样品中的CGA。
关键词亲水性分子印迹树脂    固相萃取    高效液相色谱    绿原酸    复杂样品    
Preparation of hydrophilic, magnetic molecularly imprinted resins of chlorogenic acid and evaluation of its solid-phase extraction performance
PENG Sheng1,2, LI Huan3, SHI Shuyun1,2,3     
1. Key Laboratory of Hunan Forest Products and Chemical Industry Engineering, Jishou University, Zhangjiajie 427000, China;
2. National & Local United Engineering Laboratory of Integrative Utilization Technology of Eucommiaulmoides, Jishou University, Jishou 416000, China;
3. College of Chemistry and Chemical Engineering, Central South University, Changsha 410083, China
Foundation item: National Natural Science Foundation of China (No. 81673585); Project of Key Laboratory of Hunan Forest Products and Chemical Industry Engineering (No. JDZ201802); Project of National & Local United Engineering Laboratory of Integrative Utilization Technology of Eucommia ulmoides (No. NLE201601)
Abstract: Hydrophilic, magnetic molecularly imprinted resins (MMIRs) were fabricated inside Fe3O4@mSiO2 pores by the one-pot copolycondensation of chlorogenic acid (CGA), resorcinol, melamine, and formaldehyde. The final porous MMIRs with larger numbers of surface recognition sites were obtained by removing mSiO2. The successful preparation of MMIRs was confirmed using transmission electron microscopy, Fourier transform infrared spectroscopy, vibrating sample magnetometry, thermo-gravimetric analysis, and water contact angle analysis. The analyses suggest that the MMIRs have excellent hydrophilicity and magnetic solid-phase extraction efficiency. The MMIRs had a good adsorption capacity (50.87 mg/g), fast rate of adsorption (equilibrium was attained at 70 min), and specific recognition for CGA. The MMIRs, in combination with high performance liquid chromatography, were directly used for the selective extraction and determination of CGA in Duzhong brick tea. The limit of detection and recovery were 0.7 mg/L and 93.1%-109.4%, respectively, with relative standard deviations of less than 9.6%. The proposed strategy was extremely promising for the facile, rapid, and selective determination of CGA in real aqueous samples.
Key words: hydrophilic molecularly imprinted resin     solid phase extraction (SPE)     high performance liquid chromatography (HPLC)     chlorogenic acid     complex sample    

绿原酸(chlorogenic acid, CGA)广泛存在于蕨类植物到高等双子叶植物及相关的中成药中, 具有抗氧化、抗菌、抗病毒、消炎、降脂、护肝和神经保护等方面的功效[1]。CGA是众多中药及其制剂的质量控制指标之一, 因此建立CGA准确灵敏的定性定量分析方法至关重要。

目前定性及定量分析的常用方法是高效液相色谱法(HPLC), 但是考虑到中药及其相关产品成分复杂, 在HPLC分析之前有必要对样品进行预处理[2]。固相萃取因高富集因子、操作简便等优势被广泛使用, 反相C18、SiO2、金属氧化物、碳基吸附剂和聚合物吸附剂是常用的固相萃取吸附材料[3]。其中, 分子印迹聚合物(molecularly imprinted polymers, MIPs)具有构效预定性、特异识别性和广泛实用性等优势, 可用于复杂体系中目标组分的高效特异性分离富集, 并消除基质干扰[4-8]。迄今, 科研工作者在MIPs的合成和应用方面已做出了卓有成效的工作, 多数MIPs是在有机溶剂或非极性溶剂中, 氮气保护下, 通过模板分子与烯丙基功能单体(如甲基丙烯酸、丙烯酰胺、乙烯基咪唑等)及交联剂共聚而成, 合成的MIPs在非极性溶剂中具有良好的特异性识别性能[9]。同时表面印迹技术的应用也使印迹位点位于MIPs的表面, 增强吸附性能, 如已在磁性Fe3O4、中空纤维、纳米TiO2、石墨烯碳纳米管等表面成功地合成了基于CGA特异性吸附的MIPs[10-14]。但该类MIPs在水溶液中非特异性吸附强, 而常见的中药制剂、食品、生物制品等均是水溶液体系, 因此设计水体系中具特异性识别性能的MIPs势在必行。

为了提升MIPs的亲水性, 常用的策略是设计水溶性功能单体和交联剂, 或在MIPs表面接枝亲水性聚合物刷[15-17], 但这些方法合成步骤多、专业性强。因此, 开发一种简单、可靠、有效的方法合成亲水性MIPs很有必要。间苯二酚-甲醛、三聚氰胺-甲醛和间苯二酚-甲醛-三聚氰胺水溶液中加热可共聚成树脂, 同时该类树脂具有丰富的氨基、亚氨基、羟基等极性基团, 可通过氢键、静电作用识别水溶液中的化合物[18]。因此, 结合亲水性树脂和分子印迹技术的优点, 可制备出水体系中具特异性识别性能的亲水性分子印迹树脂(molecularly imprinted resins, MIRs)[18-23], 迄今关于表面MIRs的报道寥寥无几[22, 23]。基于CGA的亲水性MIPs合成及固相萃取性能已有较多研究[12, 24, 25], 但关于CGA的MIRs研究未见报道。

本文以CGA为模板、间苯二酚和三聚氰胺为双功能单体、甲醛为交联剂、磁性介孔二氧化硅(Fe3O4@mSiO2)为载体合成了亲水性磁性MIRs(magnetic MIRs, MMIRs)。优化了合成条件, 研究了MMIRs的静态、动态和选择性吸附性能, 并结合HPLC用于杜仲黑茶中CGA的选择性分离和含量检测。结果表明该方法简便、快速, 在水体系中的选择性识别性能好。

1 实验部分
1.1 仪器、试剂与材料

安捷伦1200高效液相色谱系统(在线脱气机、四元泵、恒温柱温箱、自动进样器和二极管阵列检测器) (Agilent Technologies, USA); Nicolet 6700傅里叶红外光谱仪(Thermo Nicolet Co., USA); JEM-2100F透射电子显微镜(JEOL, Japan); JC2000D1接触角测量仪(上海中晨数字技术设备有限公司, 上海); VSM7407振动样品磁强计(Lake Shore, USA); SDTQ600热重分析仪(TA, USA); Milli-Q超纯水仪(Bedford, USA)。

三聚氰胺、间苯二酚、甲醛、聚乙二醇6000(PEG 6000)、十六烷基三甲基溴化铵(CTAB)、正硅酸四乙酯(TEOS)、氢氧化钠(NaOH)、三氯化铁(FeCl3·56H2O)、甲醇和乙醇均购自国药集团化学试剂有限公司(上海); HPLC级甲醇和乙酸购自西格玛奥德里奇贸易有限公司(上海); CGA、咖啡酸(caffeic acid, CA)、阿魏酸(ferulic acid, FA)、肉桂酸(cinnamic acid, CMA)对照品购自西亚试剂有限公司(山东)。

杜仲黑茶由张家界茶坤缘生物科技开发有限公司提供。

1.2 MMIRs的制备

图 1为MMIRs的合成示意图。首先合成Fe3O4@mSiO2, 步骤同课题组前期研究[7]。接着将间苯二酚(3 mmol)和甲醛(6 mmol)溶于超纯水(30 mL), 40 ℃下磁力搅拌1 h形成A溶液; 将三聚氰胺(1 mmol)和甲醛(3 mmol)溶于超纯水(10 mL), 80 ℃下磁力搅拌至透明, 冷却至室温形成B溶液。然后将Fe3O4@mSiO2(100 mg)、A溶液、B溶液和CGA溶液(0.04 mol/L, 10 mL)混合, 80 ℃恒温机械搅拌反应3 h。磁分离Fe3O4@mSiO2/MIRs后, 水洗3次, 将其分散于NaOH水溶液(50 g/L, 20 mL)中搅拌除去mSiO2和CGA。最后, 磁分离MMIRs, 用水洗至中性, 40 ℃真空干燥至恒重。

图 1 MMIRs合成示意图 Fig. 1 Synthetic route for preparing MMIRs

亲水性磁性非分子印迹树脂(magnetic non-molecularly imprinted resins, MNIRs)的制备除了不加模板CGA外, 所有步骤同MMIRs的合成。

1.3 HPLC分析

Waters SunFire-C18色谱柱(250 mm×4.6 mm, 5 μ m, Waters); 流动相为0.4% (v/v)乙酸(A)和甲醇(B), 梯度洗脱:0~10 min, 12%B; 10~16 min, 12%B~18%B; 16~25 min, 18%B; 柱温:25 ℃; 进样量:20 μ L; 流速:0.8 mL/min; 检测波长:254 nm。

1.4 吸附实验

吸附动力学:准确称取若干份MMIRs(MNIRs) (10.0 mg), 分别加入到CGA(1.4 g/L)的50%(v/v, 下同)乙醇水溶液(5.0 mL)中, 于25 ℃下200 r/min振荡吸附, 在不同的时间点(10~100 min)取出, 使用HPLC方法检测CGA的质量浓度Ct (g/L)。由方程(1)计算出MMIRs(MNIRs)对CGA的吸附量Qt (mg/g):

(1)

式中m (g)表示MMIRs(MNIRs)的质量, C0(g/L)和V(mL)分别是CGA溶液的初始浓度和体积。

静态吸附:准确称取若干份MMIRs(MNIRs) (10.0 mg), 分别加入到含不同质量浓度CGA(0.4~1.6 g/L)的50%乙醇溶液(5.0 mL)中, 于25 ℃下200 r/min振荡吸附70 min, 使用HPLC方法检测CGA的平衡浓度Ce (g/L)。由方程(2)计算出MMIRs(MNIRs)对CGA的平衡吸附量Qe (mg/g):

(2)

选择性吸附:选择模板分子CGA和3个结构类似物CA、FA和CMA, 准确称取4份MMIRs(MNIRs) (10.0 mg), 分别加入到含CGA、CA、FA和CMA的50%乙醇溶液中(1.4 g/L, 5.0 mL), 于25 ℃下200 r/min振荡吸附70 min, 使用HPLC方法检测平衡时CGA、CA、FA和CMA的质量浓度, 使用方程(2)计算平衡吸附量。

1.5 杜仲黑茶中绿原酸的检测

杜仲黑茶粉碎, 称取10.0 g杜仲黑茶粉末于100 ℃下用50%乙醇溶液(80.0 mL)回流提取3次, 每次提取2.0 h, 合并提取液后抽滤并减压浓缩至干燥, 得3.4 g浸膏。将MMIRs (20 mg)加入到杜仲黑茶的50%乙醇溶液中(3.0 g/L, 5 mL), 混合物在25 ℃下于200 r/min振荡吸附70 min, 磁分离MMIRs, 水洗3次除去非特异吸附成分, 然后用甲醇-水-醋酸(3 : 1 : 1, v/v/v, 5 mL)洗脱, 并用HPLC分析洗脱液。

2 结果与讨论
2.1 MMIRs的合成和表征

MMIRs的合成过程中采用Fe3O4@mSiO2为载体, CGA、间苯二酚、三聚氰胺和甲醛在mSiO2的介孔中共聚生成MIRs, 无需对mSiO2表面进行官能团修饰, 最后通过NaOH刻蚀掉mSiO2和模板分子得到MMIRs。N2吸附和解吸附实验显示MMIRs的孔径为2.95 nm, 表明MMIRs具有多孔结构、印迹位点位于材料表面。模板分子CGA的加入量及印迹时间对MMIRs的印迹效果影响较大, 少量CGA导致识别位点少, 然而过量的CGA会和功能单体形成无序自组装; 共聚时间的增加会增厚印迹层, 从而导致印迹位点的包埋及吸附量的降低。实验中考察了不同CGA的加入量以及不同共聚时间对MMIRs吸附量的影响, 最终确定CGA的加入量为0.4 mmol, 共聚时间为3 h, 合成的MMIRs对CGA具有较好的吸附行为。

图 2为Fe3O4@mSiO2/MIRs和MMIRs的透射电子显微镜(transmission electron microscope, TEM)图, Fe3O4@mSiO2/MIRs的平均粒径约200 nm, 其中壳层厚度30 nm左右[7]。除去mSiO2后, MMIRs呈现疏松多孔的核壳结构, 外部MIRs层薄约6 nm。Fe3O4、Fe3O4@mSiO2、Fe3O4@mSiO2/MIRs和MMIRs的红外光谱如图 3所示, 图 3a中576 cm-1为Fe-O强的伸缩振动峰, 图 3b中新增Si-O键在1 089和461 cm-1的振动峰, 在2 980 cm-1左右未见明显的C-H吸附峰, 表明CTAB的完全除去和Fe3O4@mSiO2的成功合成; 图 3c中, 宽而强的3 405 cm-1来自O-H和N-H的伸缩振动峰, 812 cm-1为N-H的面外弯曲振动, 1 346 cm-1和1 559 cm-1来自三聚氰胺中C-N的弯曲振动和伸缩振动, 1 160 cm-1是C-O-C的伸缩振动; 图 3d中, 未见1 089 cm-1和461 cm-1的吸收峰, 显示mSiO2的完全除去。结果表明MMIRs成功合成。

图 2 (a) Fe3O4@mSiO2/MIRs和(b)MMIRs的透射电子显微镜(TEM)图 Fig. 2 Transmission electron microscopy (TEM) images of (a) Fe3O4@mSiO2/MIRs, and (b) MMIRs

图 3 (a) Fe3O4, (b)Fe3O4@mSiO2, (c)Fe3O4@mSiO2/ MIRs和(d)MMIRs的红外光谱图 Fig. 3 FT-IR spectra of (a)Fe3O4, (b)Fe3O4@mSiO2, (c)Fe3O4@mSiO2/MIRs, and (d)MMIRs

热重分析(图 4a)显示温度升高到800 ℃时质量损失60%, 源于MIRs层的分解; 磁滞回线(图 4b)显示MMIRs的磁饱和强度为40.6 emu/g, 实验中MMIRs在外加磁场的作用下5 s内可实现磁分离, 撤除外加磁场后能快速分散, 说明制备的MMIRs具有超顺磁性、高磁响应性的特点; 水滴与MMIRs接触2 s内迅速铺展, 接触角为4.50°(图 4c), 表明MMIRs具有极强的亲水性。因此, MMIRs可实现水体系中目标化合物的快速选择性分离。

图 4 MMIRs的(a)热重分析, (b)磁滞回线和(c)水滴的轮廓图 Fig. 4 (a) Thermogravimetric analysis, (b) hysteresis loop, and (c) profile of a water drop on MMIRs
2.2 MMIRs(MNIRs)对CGA的吸附

MMIRs(MNIRs)对CGA的吸附动力学曲线如图 5a所示, 随着时间的延长吸附量逐渐增大, MMIRs在70 min时对CGA的吸附达到饱和, 而MNIRs在40 min时就趋于饱和吸附, MMIRs对CGA的吸附量远远大于MNIRs, 主要原因为MMIRs存在CGA的特异性吸附位点, 而MNIRs为表面分子间的氢键或静电作用。前期关于MIRs的合成报道中, 聚合时间为24 h左右, 平衡吸附时间为10~12 h[18-23]。因此, 表面多孔MIRs层结构以及适宜的MIRs层厚度可以使印迹位点位于表面, 加快吸附速率。

图 5 MMIRs(MNIRs)对CGA的(a)动态吸附和(b)静态吸附等温线(n=3) Fig. 5 (a) Kinetic adsorption and (b) equilibrium adsorption curves of CGA on MMIRs(MNIRs) (n=3)

MMIRs(MNIRs)对CGA的静态吸附曲线如图 5b所示, 随着CGA质量浓度的增加吸附量逐渐增加, 在质量浓度大于1.4 g/L时吸附达到平衡, MMIRs对CGA的平衡吸附量(50.87 mg/g)是MNIRs平衡吸附量(9.71 mg/g)的5.24倍, 表明了MMIRs对CGA的特异性吸附。迄今, 文献报道的基于CGA的MIPs合成均为非水体系, 在乙腈等非质子性溶剂中具备选择性吸附性能[10-14]。本文合成了在水体系中具有高特异性吸附的印迹材料。

MMIRs(MNIRs)对CGA、CA、FA和CMA的平衡吸附结果如图 6所示, MMIRs对CGA的吸附容量(50.87 mg/g)是CA(12.05 mg/g)的4.22倍, FA(16.79 mg/g)的3.03倍, CMA(14.18 mg/g)的3.59倍; CGA、CA、FA和CMA在MNIRs上的吸附容量差异不大。结构的差异性会影响吸附能力, 说明印迹孔穴与CGA的互补性。

图 6 MMIRs(MNIRs)对CGA、CA、FA和CMA的吸附容量(n=3) Fig. 6 Adsorption capacities of CGA, CA, FA, and CMA on MMIRs/MNIR (n=3)

MMIRs对CGA吸附的稳定性至关重要, 合成了5批MMIRs, 其吸附量的RSD值为6.4%, 说明了批间的稳定性; 考察了10次连续吸附-解吸附的实验结果, 随着循环次数的增加, MMIRs对CGA的吸附能力轻微下降, 10次循环后吸附量为原先的91.5%, 表明MMIRs对CGA吸附的稳定性和重复利用性能。

2.3 MMIRs-HPLC方法的建立

配制系列CGA标准溶液, 使用MMIRs进行吸附-解吸附实验, HPLC分析检测CGA, 在2.0~200.0 mg/L范围内得到CGA的线性方程为Y=52.06X-19.92(R2=0.999 3), 其中YX分别是CGA的HPLC峰面积和质量浓度(mg/L)。CGA的检出限(信噪比S/N=3)为0.7 mg/L, 定量限(信噪比S/N=10)为1.6 mg/L。方法的加标回收率为93.1% ~109.4%, 相对标准偏差小于9.6%。说明该方法可满足CGA的测定要求。

2.4 实际样品检测

将MMIRs-HPLC方法用于杜仲黑茶中CGA的测定, 图 7为杜仲黑茶经过MMIRs固相萃取前后的HPLC谱图, 经过MMIRs选择性固相萃取后, 基本不存在其他干扰性物质。最终, 测得杜仲黑茶中CGA的含量为(2.79±0.18) mg/g, 结果与文献[14]报道一致, 表明MMIRs选择性萃取分离结合HPLC分析检测可用于实际复杂体系中CGA的特异性分析。

图 7 杜仲黑茶经MMIRs萃取(a)前、(b)后的HPLC谱图 Fig. 7 HPLC chromatograms of Duzhong brick tea (a) before and (b) after extraction with MPMIPs
3 结论

本文以CGA为模板、间苯二酚和三聚氰胺为双功能单体、甲醛为交联剂、磁性介孔二氧化硅为载体合成了亲水性MMIRs。mSiO2的多孔结构提供了MIRs的聚合场所和多孔结构, 简化合成过程、增加吸附容量、加快吸附速率。MMIRs对CGA表现出良好的吸附选择性, 结合HPLC分析用于杜仲黑茶中CGA的测定, 排除复杂基质的干扰, 提高分析的准确度。MMIRs在水体系中的特异性吸附性能使其可作为新型吸附材料用于生物、环境和临床领域的研究中。

参考文献
[1] Naveed M, Hejazi V, Abbas M, et al. Biomed Pharmacother, 2018, 97: 67. doi: 10.1016/j.biopha.2017.10.064
[2] Li J, Wang Y B, Li K Y, et al. TrAC-Trends Anal Chem, 2015, 72: 141. doi: 10.1016/j.trac.2015.04.023
[3] Tang F, Yu Q W, Yuan B F, et al. TrAC-Trends Anal Chem, 2017, 86: 172. doi: 10.1016/j.trac.2016.10.007
[4] Sun J J, Zhang F F, Liang X M. Chinese Journal of Chromatography, 2018, 36(8): 723.
孙佳佳, 章飞芳, 梁鑫淼. 色谱, 2018, 36(8): 723.
[5] Zheng Y L, Gu L L, Shi J L, et al. Chinese Journal of Chromatography, 2018, 36(7): 659.
郑亚丽, 顾丽莉, 师君丽, 等. 色谱, 2018, 36(7): 659.
[6] Sun Z A, Qi Y X, Wang X, et al. Chinese Journal of Chromatography, 2018, 36(8): 716.
孙治安, 祁玉霞, 王霞, 等. 色谱, 2018, 36(8): 716.
[7] Shi S, Fan D, Xiang H, et al. Food Chem, 2017, 237: 198. doi: 10.1016/j.foodchem.2017.05.086
[8] Fan D, Jia L, Xiang H, et al. Food Chem, 2017, 224: 32. doi: 10.1016/j.foodchem.2016.12.042
[9] Xiang H, Fan D, Li H, et al. J Chromatogr B, 2017, 1049.
[10] Yan L, Yin Y, Lv P, et al. J Agric Food Chem, 2016, 64: 3091. doi: 10.1021/acs.jafc.6b00518
[11] Golsefidi M A, Es'haghi Z, Sarafraz-Yazdi A. J Chromatogr A, 2012, 1229: 24. doi: 10.1016/j.chroma.2012.01.019
[12] Zhao Y, Tang Y, He J, et al. Talanta, 2018, 181: 271. doi: 10.1016/j.talanta.2018.01.037
[13] Li H, Li G, Li Z, et al. Appl Surf Sci, 2013, 264: 644. doi: 10.1016/j.apsusc.2012.10.085
[14] Peng M J, Li H, Long R Q, et al. Molecules, 2018, 23: 1554. doi: 10.3390/molecules23071554
[15] Ma Y, Pan G, Zhang Y, et al. Angew Chem Int Ed, 2013, 52: 1511. doi: 10.1002/anie.201206514
[16] Ji W, Wang T, Liu W, et al. J Chromatogr A, 2017, 1504: 1. doi: 10.1016/j.chroma.2017.05.003
[17] Hu X, Xie L, Guo J, et al. Food Chem, 2015, 179: 206. doi: 10.1016/j.foodchem.2015.02.007
[18] Lv T, Yan H, Cao J, et al. Anal Chem, 2015, 87: 11084. doi: 10.1021/acs.analchem.5b03253
[19] Zhou T, Hou J, Yuan D, et al. RSC Adv, 2016, 6: 98663. doi: 10.1039/C6RA20698K
[20] Liang S, Yan H, Cao J, et al. Anal Chim Acta, 2017, 951: 68. doi: 10.1016/j.aca.2016.11.009
[21] Wang M, Chang X, Wu X, et al. J Chromatogr A, 2016, 1458: 9. doi: 10.1016/j.chroma.2016.06.047
[22] Li H, Long R, Tong C, et al. Talanta, 2019, 194: 969. doi: 10.1016/j.talanta.2018.10.099
[23] Zhou T, Ding J, Ni L, et al. J Chromatogr A, 2017, 1497: 38. doi: 10.1016/j.chroma.2017.03.069
[24] Hao Y, Gao R X, Liu D C, et al. Food Chem, 2016, 200: 215. doi: 10.1016/j.foodchem.2016.01.004
[25] Miura C, Li H, Matsunaga H, et al. J Pharm Biomed Anal, 2015, 114: 139. doi: 10.1016/j.jpba.2015.04.038