近年来中国进口葡萄酒的数量呈逐年上升之势,与此同时进口葡萄酒被检出标签不合格、重金属超标、添加剂超限量使用的情况时有发生。因此加强进口葡萄酒的监测,发现潜在的风险亦已成为一种共识。糖醇是醛糖或酮糖的羰基被还原成羟基的衍生物。一部分多元醇广泛存在于植物以及微生物体内,存在的形式有游离状态及化合状态。糖醇虽然不是糖但具有某些糖的属性,如其作为甜味剂可取代食糖而广泛应用于食品工业中。目前人工合成的用于食品工业的糖醇包括山梨糖醇、甘露糖醇、赤藓糖醇、乳糖醇、木糖醇等,这些糖醇对酸、热有较高的稳定性,不容易发生美拉德反应。葡萄酒中的糖醇种类、含量对酒的风味有较大的影响。从业内的信息看,在酒中加入某些多糖对提高香气复杂性、浓郁度有很好的帮助[ 1 ]。根据GB 2760-2011《食品安全国家标准 食品添加剂使用标准》[ 2 ],葡萄酒中不得添加任何形式的糖醇,对各国进口葡萄酒进行本底调查,建立相关产地葡萄酒中糖醇的种类、含量的信息库显得尤为必要。目前国内外对食品中糖醇的检测方法包括:高效液相色谱-蒸发光散射法[ 3 ]、高效液相色谱-示差折光检测法[ 4 ]、高效液相色谱-紫外检测法[ 5 ]、离子排斥液相色谱法[ 6 ]、气相色谱法[ 7 ]、气相色谱-质谱法(GC-MS)[ 8 ]、液相色谱-串联质谱法[ 9, 10, 11 ]等。离子排斥液相色谱法、气相色谱法适用于检测没有使用限量规定的糖醇。对于不允许使用的糖醇,阳性检测结果往往需要对其化学结构进行鉴定。气相色谱-质谱法中采用的方法需要将样品衍生后再氮吹复溶,然后进样,耗时较长,影响检测周期。而采用液相色谱-串联质谱法检测葡萄酒中的糖醇,则未见相关报道。
本法采用了葡萄酒样品加入吡啶,涡旋混合离心后直接衍生,加无水硫酸钠吸水后,用气相色谱-质谱联用仪检测6种糖醇(赤藓糖醇、木糖醇、甘露糖醇、山梨糖醇、半乳糖醇、乳糖醇)的方法,克服了上述方法中定性缺陷或耗时较长的不足,具有较高的灵敏度和良好的稳定性,适合葡萄酒中糖醇含量的大批量检测工作。
Thermo Scientific ISQ质谱仪,配电子轰击离子源(EI)(Thermo Scientific公司); Thermo Scientific AS300自动进样器;Thermo Scientific Trace GC Ultra气相色谱;XW-80A涡旋混合器(上海医科大学仪器厂); H-2050R高速冷冻离心机(长沙湘仪离心机仪器有限公司); Milli-Q超纯水一体机(Millipore公司);吡啶、硫酸钠(分析纯,国药集团化学试剂有限公司);醋酸酐(分析纯,上海炎晨化工实业有限公司); 6种糖醇标准品(纯度均大于99% , Dr. Ehrenstorfer公司)。
准确称取适量的6种糖醇标准品,用超纯水配制成质量浓度为1000 mg/L 的标准储备液,置于4 ℃冰箱中保存。以吡啶将6种储备液稀释成7个不同质量浓度的混合标准工作液。其中赤藓糖醇、木糖醇、甘露糖醇、山梨糖醇、半乳糖醇的质量浓度范围为0.019~1.25 mg/L,乳糖醇的质量浓度范围为0.039~2.50 mg/L。
样品为全国口岸进口的法国、智利、澳大利亚、意大利、南非、西班牙等国的葡萄酒,共计108批。
吸取葡萄酒样品1.0 mL,加入7.0 mL吡啶(在回收率试验中,加入适当浓度的标准溶液1.0 mL以及6.0 mL吡啶),混合均匀。以 5000 r/min (4 ℃)离心10 min。取上清液过有机相膜备用。
吸取过膜后的样品溶液100 μ L,加入900 μ L吡啶以及 1000 μ L醋酸酐,涡旋混合均匀,于70 ℃水浴30 min。取出冷却至室温,在衍生管中加入1.0 g无水硫酸钠,涡旋1 min,以 5000 r/min (4 ℃)离心10 min,取上清液过膜装瓶进样。
DB-5MS毛细管色谱柱(30 m×0.25 mm×0.25 μ m, Agilent公司);载气为氦气(纯度为99.999% );流速:1.0 mL/min;进样量:1.0 μ L,不分流进样。进样口温度:250 ℃。程序升温条件:初始柱温110 ℃,保持1 min;以20 ℃/min 速率升温至160 ℃,保持0 min;以1 ℃/min 速率升温至200 ℃,保持0 min;以25 ℃/min 速率升温至305 ℃,保持4.5 min。
溶剂延时:5 min;离子化模式:电子轰击(EI);电离能量:70 eV;离子源温度300 ℃; GC-MS接口温度:280 ℃;选择离子监测(SIM)模式。各糖醇衍生物的保留时间和特征离子等参数见表1。
由于甘露糖醇、山梨糖醇和半乳糖醇的相对分子质量均为182.17,且甘露糖醇为山梨糖醇的异构体。因此若升温速度过快,无法将甘露糖醇和山梨糖醇的衍生物分开。在柱温箱温度达到160 ℃时,以1 ℃/min 速率升温至200 ℃并保持0 min,可以有效分离这两个峰,分辨率为1.12(见图1)。
离子源温度对标准品的信号响应值影响较大。实验过程中发现,随着离子源温度的升高,糖醇衍生物的灵敏度相应增加。但是温度过高可能会使离子源材料和部件受损,缩短离子源寿命。考虑到离子源的使用温度上限(<350 ℃)以及实际检测的技术要求,最终将离子源的温度设定成300 ℃。
采用衍生化方式测定糖醇,需要过量的醋酸酐。从108批样品的检测数据比较看,过量的醋酸酐对仪器没有影响。首先,DB-5MS毛细管柱在反复使用6个月后,对6种糖醇衍生物的保留没有太大的变化,6种糖醇衍生物保留时间的位移均在±0.03 min之间,符合技术要求。从仪器调谐的情况看,在测定糖醇之前倍增器(multiplier)的电压为 1232.3 V,所有样品测定完毕后再次调谐,倍增器的电压为 1233.7 V,说明检测器没有受到污染。
在1.5节条件下,6种糖醇衍生物均能有效分离。样品加标后会出现一些衍生物的杂峰,但均不在6种糖醇衍生物的出峰处,对检测结果没有影响(见图2和图3)。
在1.5节中优化的条件下,以峰面积为纵坐标(y),以糖醇含量为横坐标(x, mg/L)进行线性回归,得到回归方程和相关系数;同时进行样品添加试验,分别以信噪比(S/N)为3和10确定各糖醇在红酒样品中的检出限(LOD)和定量限(LOQ),结果见表2。
从108批葡萄酒的检测结果看,乳糖醇的测定结果都低于检出限,其他5种糖醇均有检出(部分数据见表3)。无论是欧洲还是南美的葡萄酒,木糖醇(5.36~9.41 mg/L)和半乳糖醇(9.99~11.46 mg/L)的含量都不高。而赤藓糖醇(55.88~113.97 mg/L)、甘露糖醇(37.86~308.19 mg/L)、山梨糖醇(61.20~157.11 mg/L)的含量显然要高得多。澳大利亚进口的30批葡萄酒中赤藓糖醇(113.97 mg/L)、甘露糖醇(308.19 mg/L)、山梨糖醇(157.11 mg/L)的含量要明显高于其他产地的葡萄酒。在实际样品中进行了两个水平的加标回收试验,具体结果见表3。
建立了先采用醋酸酐衍生然后用气相色谱-质谱联用仪检测葡萄酒中糖醇的方法。该方法简化了样品前处理的步骤,对来源于法国、意大利、南非等国的葡萄酒中6种糖醇的含量进行了测定。该方法的灵敏度、准确度和精密度均符合相关的技术要求,适用于葡萄酒中糖醇含量的快速检测。