色谱  2013, Vol. 31 Issue (11): 1046-1050   PDF (772KB)    
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吕辰
丁涛
马昕
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袁芳
吴斌
沈崇钰
张睿
费晓庆
张晓燕
陈磊
李丽
高效液相色谱-串联质谱法测定蜂蜜中的5种双稠吡咯啶类生物碱
吕辰2, 丁涛1 , 马昕3, 陈国松2, 袁芳1, 吴斌1, 沈崇钰1, 张睿1, 费晓庆1, 张晓燕1, 陈磊1, 李丽4    
1. 江苏出入境检验检疫局食品实验室, 江苏 南京 210001;
2. 南京工业大学理学院, 江苏 南京 211816;
3. 宁夏出入境检验检疫局, 宁夏 银川 750001;
4. 桂林理工大学化学与生物工程学院, 广西 桂林 541004
摘要:建立了强阳离子固相萃取-高效液相色谱-串联质谱法用于测定蜂蜜中野百合碱、克氏千里光宁、倒千里光碱、千里光菲啉和千里光宁等5种双稠吡咯啶类生物碱。蜂蜜样品用0.1 mol/L盐酸溶解,强阳离子交换固相萃取柱富集净化后,高效液相色谱-串联质谱进行定性和定量。以Phenomenex C18柱(100 mm×4.6 mm, 2.6 μm)为分析柱,乙腈和0.1%(体积分数)甲酸-5 mmol/L乙酸铵水溶液为流动相进行梯度洗脱,在电喷雾正离子多反应监测模式下进行检测。结果表明,5种双稠吡咯啶类生物碱在1~100 μg/L范围内线性关系良好,线性相关系数均大于0.99。在1、20和50 μg/kg加标水平下,11种不同种类蜂蜜中的5种双稠吡咯啶类生物碱的平均回收率为73.1%~107.1%,相对标准偏差(RSD)为4.1%~17.0%,方法检定量限可达到1.0 μg/kg。该方法准确灵敏,可适用于不同种类进出口蜂蜜中双稠吡咯啶类生物碱的监控分析。利用该方法对来自中国8个省及自治区的洋槐蜜、葵花蜜、棉花蜜、油菜蜜、荆条蜜、枣花蜜、荞麦蜜和来自新西兰、西班牙、澳大利亚等国家的进口蜂蜜进行了筛查。结果发现,野百合碱、克氏千里光宁和倒千里光碱均未检出,而千里光菲啉和千里光宁在大多数蜂蜜中均能检出,千里光菲啉含量在11.0~31.1 μg/kg范围内,千里光宁含量在8.3~29.1 μg/kg范围内。
关键词液相色谱-串联质谱     双稠吡咯啶类生物碱     蜂蜜    
Determination of five pyrrolizidine alkaloids in honey by liquid chromatography-tandem mass spectrometry
LÜ Chen2, DING Tao1 , MA Xin3, CHEN Guosong2, YUAN Fang1, WU Bin1, SHEN Chongyu1, ZHANG Rui1, FEI Xiaoqing1, ZHANG Xiaoyan1, CHEN Lei1, LI Li4    
1. Laboratory of Food, Jiangsu Entry-Exit Inspection and Quarantine Bureau, Nanjing 210001, China;
2. College of Sciences, Nanjing University of Technology, Nanjing 211816, China;
3. Ningxia Entry-Exit Inspection and Quarantine Bureau, Yinchuan 750001, China;
4. Department of Chemistry and Biological Engineering, Guilin University of Technology, Guilin 541004, China
Abstract: A liquid chromatography-tandem mass spectrometry (LC-MS/MS) method was developed for the determination of five pyrrolizidine alkaloids (PAs) (monocrotaline, senkirkine, retrorsine, seneciphylline and senecionine) in honey. The honey samples were dissolved in 0.1 mol/L hydrochloric acid solution and a strong-cation exchange column was used to purify and concentrate the target analytes. The separation of the analytes was carried out on a Phenomenex C18 column(100 mm×4.6 mm, 2.6 μm)using the mobile phases of acetonitrile and 5 mmol/L ammonium acetate-0.1% (volume percentage) formic acid aqueous solution with gradient elution. The separated compounds were detected in multiple reaction monitoring (MRM) mode via positive electrospray ionization (ESI+). The calibration curves were of good linearity in the range of 1-100 μg/L (r >0.99). The limit of quantification of the method was 1.0 μg/kg. The average recoveries were between 73.1% to 107.1% at three spiked levels (1, 20 and 50 μg/kg) with the relative standard deviations(RSDs)in the range of 4.1% to 17.0%. The proposed method was applied to different kinds of honey from China, New Zealand, Spain and Australia. The samples included rape, vitex, sunflower, cotton, tilia tree, date, acacia, buckwheat, manuka and eucalyptus honey. Monocrotaline, senkirkine and retrorsine were not detected in the collected honey samples. However, seneciphylline and senecionine were found in most of the honey samples. The concentrations of seneciphylline and senecionine were 11.0-31.1 μg/kg and 8.3-29.1 μg/kg, respectively.
Key words: liquid chromatography-tandem mass spectrometry (LC-MS/MS)     pyrrolizidine alkaloids (PAs)     honey    
双稠吡咯啶类生物碱(pyrrolizidine alkaloids, PAs)存在于世界上 6000 余种有花植物当中,包括紫草科、菊科和豆科等多类植物[ 1 ]。PAs大多数是由具有双稠吡咯啶环的氨基醇和不同的有机酸两部分缩合形成,长期食用含有PAs的食品会导致肝硬化、肺结核、癌症等疾病[ 2, 3 ]。PAs中毒是慢性过程,不易引起人们的注意。2012年10月欧洲药品管理局发布公告[ 3 ],列举了一些国家对双稠吡咯啶类生物碱每日容许摄入量的要求:1992年,德国规定PAs日均摄入量不能超过1 μ g,且每年摄入时间不能连续超过6周;2001年,澳大利亚和新西兰的食品标准规定PAs日均摄入量不得超过1 μ g/kg(体重);2007年,荷兰国家公共卫生及环境研究院规定PAs日均摄入量不应超过0.1 μ g/kg(体重)。自然界中,蜜蜂在采集花蜜过程中会误食含PAs的植物,从而导致PAs随食物链进入蜂蜜当中,而消费者长期食用含有PAs的蜂蜜会产生毒副作用。

目前双稠吡咯啶类生物碱的检测方法主要是液相色谱法。其中常用的检测器包括紫外检测器[ 4, 5 ]以及质谱检测器[ 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11 ]。由于PAs是双稠吡咯啶环的氨基醇和不同的有机酸两部分缩合形成,无共轭体系,紫外吸收不强。尽管高效液相色谱-紫外检测法可以对PAs进行测定,但是检测灵敏度较低,抗干扰能力弱,不能完全满足检测需求。相比其他检测方法,高效液相色谱-串联质谱法具有定性和定量准确等特点,已广泛应用于各类生物碱的检测[ 12, 13 ]。国外已有研究各类植物[ 5, 6, 7, 8 ]和蜂蜜[ 9, 10, 11 ]中双稠吡咯啶类生物碱的检测方法,但国内相应的研究除了基本的毒性报道之外,还没有对应的检测方法报道。本文建立了蜂蜜中5种双稠吡咯啶类生物碱的检测方法,并对国内8种天然蜂蜜和新西兰、西班牙和澳大利亚等国家的3种蜂蜜中5种双稠吡咯啶类生物碱的含量进行测定,为监管部门有效监控产品质量提供了技术和数据支持。



1 实验部分
1.1 仪器与试剂

高效液相色谱仪(Agilent 1200,美国Agilent公司),三重四极杆串联质谱联用仪(API4000,美国AB公司);高纯水发生器(ELGA-Q15,英国ELGA公司);涡旋混合器;固相萃取装置;氮吹浓缩装置。

双稠吡咯啶类生物碱标准品:野百合碱(monocrotaline)、克氏千里光宁(senkirkine)、倒千里光碱(retrorsine)、千里光菲啉(seneciphylline)、千里光宁(senecionine),纯度均为99% ,德国Dr. Ehrenstorfer公司。乙腈、甲酸、醋酸铵为色谱纯,购自德国Merck公司;甲醇、氨水和盐酸为分析纯;试验用水均为去离子水。强阳离子固相萃取柱(Oasis MCX, 3 mL/60 mg,美国Waters公司)。国产蜂蜜样品来自中国8个省及自治区,进口蜂蜜来自新西兰、西班牙和澳大利亚。

1.2 标准溶液的配制

分别称取5种双稠吡咯啶类生物碱标准品各10 mg于10 mL容量瓶中,用甲醇溶解,配制成1 g/L 的标准储备液,密封保存于4 ℃冰箱中。再分别准确吸取1 g/L 的5种单标准储备液各1 mL于100 mL容量瓶中,用甲醇定容得10 mg/L 的混合标准溶液。使用时用初始流动相将混合标准溶液稀释成系列浓度的标准溶液,待测。

1.3 样品前处理

准确称取2.0 g样品于50 mL带盖聚四氟乙烯离心管中,加入10 mL 0.1 mol/L 盐酸,涡旋混合均匀。Oasis MCX固相萃取柱预先用3 mL甲醇和3 mL水活化,将样品溶液以小于1 mL/min 的流速过柱,依次用3 mL水和3 mL甲醇淋洗,加入5 mL 5%(如无特殊说明均为体积分数)氨水甲醇溶液洗脱。收集的洗脱液于40 ℃下用氮气吹干,用2.0 mL乙腈-水(25 ∶ 75, v/v)溶液溶解,过0.45 μ m有机和水相滤膜后供HPLC-MS/MS分析测定。

1.4 色谱-质谱条件
1.4.1 色谱条件

色谱柱为Phenomenex Kinetex C18(100 mm×4.6 mm, 2.6 μ m)。流动相A为0.1%甲酸-5 mmol/L 乙酸铵水溶液,流动相B为乙腈。流动相梯度:0~3 min, 10%B; 3~4.5 min, 10%B~90%B; 4.5~10 min, 90%B; 10~11 min, 90%B~10%B; 11~13min, 10%B。流速0.50 mL/min;进样量5 μ L;柱温30 ℃。

1.4.2 质谱条件

扫描方式:电喷雾正离子模式(ESI+);检测方式:多反应监测(MRM);喷雾电压:4500 V;去簇电压:80 V;气帘气压强:69 kPa;碰撞气压强:34.5 kPa;去溶剂温度:500 ℃;雾化气压强:345 kPa;辅助气压强:345 kPa; 5种双稠吡咯啶类生物碱的质谱检测详细参数见表1。

表 1 5种双稠吡咯啶类生物碱的质谱检测参数 Table 1 MS/MS parameters for the five PAs
2 结果与讨论
2.1 色谱和质谱条件的优化

分析比较了乙腈-水、乙腈-5 mmol/L 乙酸铵溶液、乙腈-0.1%甲酸-5 mmol/L 乙酸铵溶液作为流动相时5种PAs的保留和峰形。结果表明,流动相中加入适量乙酸铵有助于5种PAs化合物的色谱保留,但峰形会略微拖尾。而随着少量甲酸的加入,5种PAs的保留时间均有所提前且峰形更对称。同时,正离子模式下加入少量的酸有利于目标化合物的离子化,使灵敏度提高10% ~20% 。

分析中对常规碳十八分析色谱柱Varian Polaris(填料粒径5 μ m)和超高效碳十八分析色谱柱Phenomenex Kinetex(填料粒径2.6 μ m)进行了比对,发现超高效分析色谱柱由于柱效高,可以有效消除某些特种蜂蜜(如洋槐)中的干扰,由于分析物只有5种(10个离子通道),在不分段扫描的情况下每个峰的扫描点数可以达到15个,满足定量需要。因此选用超高效碳十八分析色谱柱Phenomenex Kinetex,典型的蜂蜜基质加标色谱图见图1。

图 1 添加5种双稠吡咯啶类生物碱(1 μ g/kg) 的洋槐蜂蜜的选择离子流色谱图 Fig. 1 Chromatograms of 5 PAs (1 μ g/kg) spiked in pagoda tree flower honey

质谱分析中采用最为常用的电喷雾电离源(ESI)对5种PAs进行去簇电压、碰撞能量、喷雾气流量的优化,分别选取信号强度最强的两个离子碎片作为定性和定量离子。尽管有文献[ 11 ]报道,对于双稠吡咯啶类生物碱,使用大气压化学电离源(APCI)比使用ESI在24 h不间断分析中信号更稳定。但实际分析中发现12 h连续进样,使用ESI时信号峰面积变化不超过15% ,可以满足残留分析的精度要求。

2.2 固相萃取净化的选择

在酸性条件下,双稠吡咯啶类生物碱的叔氨基团容易形成阳离子,可采用强阳离子固相萃取柱(Waters Oasis MCX)进行富集和净化。通过标准溶液(100 μ g/L)过柱试验,5种PAs的回收率均能达到85%以上。同时,使用改性聚合物固相萃取柱(Waters Oasis HLB, 60 mg/3 mL)进行对比, 以pH 9的磷酸盐缓冲溶液为上样溶液,以水淋洗,甲醇洗脱。结果发现野百合碱的回收率低于60% 。造成回收率偏低的原因为野百合碱水溶性较好,在完全依靠范德华力为保留机理的反相固相萃取柱上保留较弱,容易产生穿透而造成损失。在实际样品分析中发现进口麦努卡等品种蜂蜜在进行阳离子交换富集净化中容易出现堵塞情况,而中国蜂蜜则相对不容易堵塞固相萃取柱。导致这种情况的原因在于进口蜂蜜中蛋白质和花粉含量一般都高于中国蜂蜜。为避免出现堵塞的情况,应在过柱之前进行高速离心(6000 r/min),过定性滤纸后再进行固相萃取净化。用强阳离子固相萃取柱对1、20和50 μ g/kg 共3个添加水平的11种蜂蜜进行富集和净化,回收率和精密度均可达到满意的效果(见表2)。

表 2 11种蜂蜜中5种PAs的加标回收率及相对标准偏差(n=5) Table 2 Recoveries and relative standard deviations(RSDs)of the five PAs spiked in 11 kinds of honey samples (n=5)
2.3 方法的线性范围、回收率、精密度

按1.2节方法制备10 mg/L 的5种双稠吡咯啶类生物碱标准储备液,用乙腈-水(10 ∶ 90, v/v)稀释,依次得到质量浓度分别为1、5、10、20、50、100 μ g/L 的标准溶液。按优化后的仪器条件测定,外标法定量。以5种PAs特征离子的质量色谱峰面积为纵坐标y,质量浓度为横坐标x,绘制标准曲线。5种PAs的相关系数(r)均大于0.99,表明5种PAs在1~100 μ g/L 范围内线性关系良好。以信噪比(S/N)大于10且回收率和精密度较好的浓度点确定定量限(LOQ),5种PAs的LOQ为1.0 μ g/kg。分别对江苏油菜蜜、河南荆条蜜、新疆葵花蜜、宁夏棉花蜜、吉林椴树蜜、陕西枣花蜜、山东洋槐蜜、内蒙古荞麦蜜、新西兰麦努卡蜂蜜、西班牙桉树蜜和澳大利亚麦努卡蜂蜜等11种蜂蜜样品进行3个不同加标水平的回收率测定,每个水平平行测定5次,加标回收率及相对标准偏差结果见表2。

2.4 实际样品分析

对8个国产蜂蜜及3个进口蜂蜜样品进行了筛查。结果发现,野百合碱、克氏千里光宁和倒千里光碱均未检出;而千里光菲啉和千里光宁在大多数蜂蜜中均能检出,千里光菲啉含量在11.0~31.1 μ g/kg 范围内,千里光宁含量在8.3~29.1 μ g/kg 范围内。阳性蜂蜜样品的选择离子流色谱图见图2。

图 2 阳性样品中5种双稠吡咯啶类生物碱的选择离子流色谱图(千里光菲啉20.0 μ g/kg,千里光宁28.6 μ g/kg) Fig. 2 Chromatograms of the 5 PAs in a positive sample (seneciphylline 20.0 μ g/kg, senecionine 28.6 μ g/kg)
3 结论

本文建立了蜂蜜中野百合碱、克氏千里光宁、倒千里光碱、千里光菲啉、千里光宁共5种双稠吡咯啶类生物碱的高效液相色谱-串联三重四极杆质谱分析方法。该方法前处理过程简便、灵敏度高,为蜂蜜中双稠吡咯啶类生物碱含量的监控提供了技术保障。由于双稠吡咯啶类生物碱种类繁多,在饲料、牛羊内脏及其乳制品中都易出现残留,但有很多种类受到标准品的限制还没有建立相应的检测方法,有必要进一步深入和拓展现有的研究。

参考文献
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