苯甲酸是一种最常用的食品防腐剂。在食品中添加少量苯甲酸对人体并无毒害[ 1 ]。然而有报道指出对于敏感人群,较多地摄入苯甲酸及其盐会引起过敏反应,例如哮喘、荨麻疹、代谢性酸中毒和抽搐等症状[ 2, 3 ]。在同时含有维生素C和苯甲酸的饮料中检出了致癌物质苯,该化合物是由苯甲酸经过脱羧反应生成的[ 4 ]。2006年4月,韩国食品和药品管理局宣布了对市售的30种富含维生素饮料的检测结果,在其中27种饮料中检测到了苯,含量范围为5.7~87.8 μ g/kg。尽管如此,苯甲酸在许多国家仍然被作为一种食品防腐剂,但每个国家允许的最大使用量不同。为了保障食品中苯甲酸的准确测定和测定结果的一致互认,2012年亚太计量规划组织(APMP)开展了橙汁中苯甲酸含量测定的国际比对APMP.QM-P23。比对工作由新加坡卫生科学局(Health Sciences Authority, HSA)组织实施,包括中国计量科学研究院(National Institute of Metrology, NIM)化学计量与分析研究所在内的不同国家的12个实验室参加了此次比对活动。
目前,有关苯甲酸的检测方法主要有气相色谱法(GC)[ 5 ]、气相色谱-质谱法(GC-MS)[ 6 ]、高效液相色谱法(HPLC)[ 7, 8, 9, 10 ]、液相色谱-质谱法(LC-MS)[ 11, 12, 13, 14 ]和毛细管电泳法(CE)[ 15, 16 ]等。其中GC和GC-MS方法由于需要衍生化等前处理步骤较复杂,CE方法尽管有很多优点,但是在多数实验室并未普及,本实验室采用高效液相色谱-紫外检测(HPLC-UV)和液相色谱-同位素稀释质谱法(LC-IDMS)两种方法对橙汁比对样品中的苯甲酸进行测定,取得测定结果的一致互认。
岛津LC-20AT高效液相色谱仪,配二极管阵列检测器(日本岛津公司); ACQUITY UPLCTM超高效液相色谱仪-Xevo TQ-S电喷雾串联四极杆质谱仪(美国Waters公司); XP205电子天平(精度为 0.00001 g,瑞士Mettler Toledo公司); SIGMA 3-18K离心机(德国Sartorius公司); KQ3200型超声波清洗器(昆山市超声仪器有限公司); Vortex-Genie 2型涡旋混合器(美国Scientific Industries公司); Milli-Q高纯水发生器(美国Millipore公司)。
甲醇(色谱纯,德国Merck公司);乙腈(色谱纯,美国Fisher公司);乙酸铵(分析纯,北京化工厂);乙酸(纯度为99.8% ,美国Sigma-Aldrich公司);实验用水均来自Milli-Q纯水系统。苯甲酸溶液标准物质(1.00 mg/mL,扩展不确定度U=1% ,包含因子k=2;中国计量科学研究院)作为标准品储备液使用。同位素标记苯甲酸(benzoic acid-13C6,纯度99% ; Cambridge Isotope Laboratories, Inc.)。空白橙汁为国内市售多个品牌混合的100%橙汁,比对样品橙汁(2瓶,30 mL/瓶)为新加坡卫生科学局提供。
准确称取苯甲酸标准溶液(准确称量至 0.00001 g)适量,经混合溶剂(空白橙汁-甲醇-水(5 ∶ 4 ∶ 16, v/v))稀释,配制含量分别为19.1 mg/kg 和21.1 mg/kg 的苯甲酸低浓度和高浓度标准工作溶液,供HPLC分析使用。
准确称取同位素标记苯甲酸(准确称量至 0.00001 g)适量,经混合溶剂(甲醇-10 mmol乙酸铵(1 ∶ 4, v/v))稀释,配制含量约为 1000 mg/kg 的标记苯甲酸标准储备液。
分别称取苯甲酸和同位素标记苯甲酸标准储备液适量,配制含量均约为100 μ g/kg 的混合标准溶液,供LC-MS分析使用。
称取比对样品约2 g(准确称量至 0.00001 g),用约30 μ L氨水溶液(1 ∶ 1, v/v)调节pH至近中性,加溶剂(甲醇-水(1 ∶ 4, v/v))稀释至10 g,涡旋30 s后,于 8000 r/min、4 ℃条件下离心10 min,取上清液经0.2 μ m GHP滤膜过滤,弃去初滤液,取中段滤液供HPLC测定。
称取比对样品约2 g,准确加入约0.2 g同位素标记苯甲酸标准储备液,涡旋30 s后,用氨水溶液调节pH至近中性,经混合溶剂(甲醇-10 mmol乙酸铵(1 ∶ 4, v/v))稀释至溶液中内标含量约为100 μ g/kg,涡旋过滤后供LC-MS/MS测定。
色谱柱:Hypersil BDS C18柱(250 mm×4.6 mm, 5 μ m;美国赛默飞世尔公司);流动相A为20 mmol/L 乙酸铵水溶液,流动相B为甲醇。梯度洗脱程序:0~8.0 min, 2.8%B; 8.0~9.5 min, 2.8%B~90%B; 9.5~17.5 min, 90%B; 17.5~30 min, 2.8%B。流速:1 mL/min;柱温:40 ℃;进样体积:10 μ L;紫外检测波长:230 nm。
LC条件:色谱柱为BEH C18柱(50 mm×2.1 mm, 1.7 μ m;美国Waters公司);流动相A为水,流动相B为乙腈。梯度洗脱程序:0~2.5 min, 10%B; 2.5~3.5 min, 10%B~90%B; 3.5~6 min, 90%B; 6~10 min, 10%B。流速为0.2 mL/min;进样体积为2 μ L。
IDMS条件:电喷雾离子源(ESI);负离子扫描方式;多反应监测(MRM)模式;毛细管电压:2.5 kV;干燥气温度:500 ℃;干燥气流速:900 L/h;苯甲酸的定量离子对:m/z 121.0/77.1(锥孔电压:36 V;碰撞能量:12 eV);同位素标记苯甲酸的定量离子对:m/z 127.1/83.1(锥孔电压:40 V;碰撞能量:10 eV)。
橙汁中苯甲酸的检测属于常量分析,用HPLC-UV检测方法可以满足测定的要求。APMP.QM-P23比对样品苯甲酸的含量范围为50~200 mg/kg,可以应用HPLC-UV方法进行检测。为了保证测定结果的准确性,本文同时建立了橙汁中苯甲酸含量测定的LC-IDMS方法。根据新加坡卫生科学局提供的比对结果报告,12家参加比对的实验室中5家实验室采用了HPLC-UV方法,6家实验室采用了LC-IDMS方法,本实验室采用了两种方法给出结果。
图1为12家实验室橙汁样品中苯甲酸测定结果的分布图。由图1可知,此次比对结果的中位值是102.15 mg/kg,不确定度为1.50 mg/kg, 12家实验室结果在81.13~108.9 mg/kg 范围内,与中位值的偏差在-20.6% ~6.6%之间,其中本实验室(NIM)的结果为102.0 mg/kg,与中位值的差异为0.15% 。综上可知,虽然橙汁中苯甲酸的检测是常量分析,但是由于纯橙汁基体复杂,内源性干扰物质较多,其分离方法较为复杂,有必要重点对色谱分离、样品预处理等条件进行详细考察。
按1.3节所述方法对橙汁样品进行分析,在合适的色谱条件下,苯甲酸与其他组分可以达到较好的分离。由于橙汁样品的组成复杂,还考虑了用固相萃取(SPE)的方法进行初步净化处理[ 10 ]。将离心后的加标橙汁样品5 mL转移到固相萃取柱OASIS-WAX(6 mL, 150 mg, 30 μ m;预先依次用5 mL甲醇和5 mL水活化)中,分别用5 mL 2%甲酸水溶液和5 mL水淋洗,最后用5 mL氨化甲醇溶液(氨水-甲醇(5 ∶ 95, v/v))洗脱,抽至近干。洗脱液经HPLC分析,并与未经SPE处理的加标橙汁样品的色谱图比较(见图2),苯甲酸及其相邻组分的分离度并没有明显改善,只是更大极性的组分在淋洗阶段被去除。考虑到分析时间以及操作的简便性和重复性等因素,最终选择了直接进样分析而没有采用固相萃取的前处理方法。
实验中发现,在过滤过程中,滤膜对苯甲酸有少量的吸附,可能是由滤膜的材质和特性引起的。本研究比较了0.2 μ m Nylon、0.2 μ m GHP和0.45 μ m GHP等3种滤膜对苯甲酸测定的影响,苯甲酸在3种滤膜上吸附率分别为2.3% 、0.9%和1.5% ,故采用0.2 μ m GHP滤膜过滤。
本实验分别考察了Zorbax Eclipse Plus C18(150 mm×4.6 mm, 5 μ m)和Hypersil BDS C18(250 mm×4.6 mm, 5 μ m)两种色谱柱和流动相体系对橙汁样品中苯甲酸分离效果的影响。
采用Zorbax Eclipse Plus C18色谱柱,采用我国国家标准方法中测定苯甲酸所用的流动相体系[ 7 ],即甲醇-20 mmol/L 乙酸铵体系,苯甲酸与橙汁中的干扰组分不能达到完全分离(见图3a)。本文考察了流动相中添加酸对分离效果的影响。从图3可以看出,随着流动相中乙酸含量的增加,苯甲酸的保留时间逐渐延长,当流动相组成为甲醇-20 mmol/L 乙酸铵-0.01%乙酸水溶液体系时,苯甲酸与橙汁中的其他组分得到了较好的分离。这是由于苯甲酸是弱酸,在中性流动相中部分解离以离子形态存在,在C18柱上的保留相对较弱,导致出峰时间靠前。而当流动相中加入乙酸后,随着流动相pH的降低,苯甲酸的解离受到抑制,而以分子形态存在,故在C18柱上的保留变强,从而出峰时间延后[ 17 ]。
采用Hypersil BDS C18色谱柱,采用我国国家标准方法中测定苯甲酸所用的甲醇-20 mmol/L 乙酸铵流动相体系,将流动相比例进一步优化,当甲醇的初始比例为2.8%时,样品中的苯甲酸与相邻组分可以达到较好的分离。
以上实验结果表明,分别采用两种色谱柱及对应的色谱条件均可以对橙汁中苯甲酸进行测定,本研究采用Hypersil BDS C18色谱柱及相对简单的甲醇-乙酸铵体系完成后续橙汁中苯甲酸含量的测定。
分别考察了柱温为30、35和40 ℃时橙汁样品的分离效果。从图4中可以看出,色谱柱温度的改变会在一定程度上影响样品中苯甲酸的保留时间以及其与干扰物的分离度。在40 ℃时,苯甲酸能够与样品中干扰组分实现较好的分离,并且所需分析时间最短,所以柱温选为40 ℃。
本实验考察了甲醇-水(1 ∶ 4, v/v)和甲醇-10 mmol/L 乙酸铵(1 ∶ 4, v/v)两种混合稀释溶剂对苯甲酸色谱行为的影响。图5a和图5b分别为以甲醇-水和甲醇-乙酸铵作稀释溶剂时在甲醇-水流动相条件下的色谱图,从图5中可以看出稀释溶剂为甲醇-10 mmol/L 乙酸铵(1 ∶ 4, v/v)时苯甲酸和内标的色谱行为都较甲醇-水(1 ∶ 4, v/v)时有明显的改善。
如上所述,在色谱分离过程中加入缓冲盐有助于苯甲酸及其内标色谱行为的改善,但是实验发现若流动相中加入缓冲盐(例如10 mmol/L 乙酸铵)则严重影响待测组分在质谱检测时的离子化效率,进而影响待测组分的检出限。于是,本文在样品稀释溶剂中加入缓冲盐(2.2.1节所述)的前提下,考察了分别在甲醇-水(图5b)和乙腈-水(图5c)两种不含缓冲盐的流动相体系下待测组分的色谱行为。结果表明,两种体系下待测组分都有较好的信噪比,乙腈-水体系下待测组分的峰形优于甲醇-水体系,更适合于实际样品的分析检测。
HPLC-UV用混合溶剂(空白橙汁-甲醇-水(5 ∶ 4 ∶ 16, v/v/v))稀释苯甲酸标准储备液,对含量范围为0.5~200 mg/kg 的一系列苯甲酸标准溶液进行了HPLC测定。以峰面积y对含量x作图得标准曲线方程为y=30291x-218.92(r2=1.0000),表明在0.5~200 mg/kg 范围内线性关系良好。采用在空白基质中添加目标组分的方法,以信噪比(S/N)大于3确定方法检出限(LOD)为0.75 mg/kg。
LC-IDMS在本方法所确定的实验条件下,对含量范围为0.01~0.5 mg/kg 的苯甲酸标准溶液进行LC-IDMS测定。以分析物与内标物峰面积的比值y对分析物含量x做标准曲线,得到标准曲线方程为y=0.0089x+0.0755(r2=0.9999)。以S/N>3确定方法LOD为0.05 mg/kg。
以市售某品牌100%橙汁为空白样品,在其中添加100 mg/kg(与比对样品中苯甲酸真实含量接近)的苯甲酸标准溶液进行添加回收试验,按选定的方法进行样品的前处理和测定,重复6次,采用HPLC-UV方法测定的平均加标回收率为99.4% ,相对标准偏差(RSD)为0.16% ;采用LC-IDMS方法测定的平均加标回收率为99.6% , RSD为0.61% 。
在相同的色谱条件下,将样品溶液的色谱图与标准溶液的色谱图对照,根据保留时间定性。在进样体积相同的条件下,采用括弧法(bracketing method)定量,计算比对样品中苯甲酸的含量,测定结果和有关参数有以下函数关系:
式中:X为橙汁样品中苯甲酸的含量(mg/kg);A为样品溶液中苯甲酸的峰面积;Al为低浓度苯甲酸标准溶液中苯甲酸的峰面积;Ah为高浓度苯甲酸标准溶液中苯甲酸的峰面积;Cl为低浓度苯甲酸标准溶液的苯甲酸含量(mg/kg);Ch为高浓度苯甲酸标准溶液的苯甲酸含量(mg/kg);m为称取橙汁样品的质量(g);W为样品溶液的质量,为实际样品加溶剂之后的质量(g)。
每瓶比对样品取样3次,按选定的方法进行样品的前处理和测定。分析时先以低浓度标准溶液、样品、高浓度标准溶液的次序进行一组测定,下一组时则以相反的次序进样,如此重复分析3次完成一瓶比对样品的分析。2瓶橙汁比对样品中苯甲酸的测定结果为(102.5±1.4) mg/kg (k=2)。
测定结果的不确定度主要由测定结果的重复性、苯甲酸溶液标准物质和样品称量等引入的不确定度组成,具体表现为以下3个部分。
⑴测定结果重复性引入的不确定度u1。
色谱仪器的稳定性、比对样品的均匀性、离心过滤等样品预处理过程对测定结果造成的误差均体现在测定重复性中,由6次测定结果的相对标准偏差表示,得到u1=0.40% 。
⑵配制苯甲酸标准溶液引入的不确定度u2。
包括GBW(E)100006 苯甲酸溶液标准物质的不确定度0.5% 、苯甲酸溶液标准物质称量引入的不确定度 0.0184%和溶剂称量引入的不确定度 0.000368% 。合成标准溶液不确定度
。
⑶样品制备引入的不确定度u3。
包括样品称量引入的不确定度 0.0046% 、溶剂称量引入的不确定度 0.00115% 。合成样品溶液不确定度。
将以上3项不确定分量合成,得到合成和扩展不确定度:合成相对标准不确定度;相对扩展不确定度Urel=2×uLC=1.28%(k=2);扩展不确定度U=C×Urel=102.48×1.28%=1.32 mg/kg (k=2)。
样品中苯甲酸与内标的含量比和峰面积比在两个校正标准之间符合线性关系。橙汁中苯甲酸的含量可采用括弧法由以下公式计算:
式中:X为橙汁样品中苯甲酸的含量(mg/kg); R为上机样品溶液中苯甲酸与标记苯甲酸的峰面积比;Rl为低浓度苯甲酸标准溶液中苯甲酸与标记苯甲酸的峰面积比;Rh为高浓度苯甲酸标准溶液中苯甲酸与标记苯甲酸的峰面积比;Wl为低浓度苯甲酸标准溶液中苯甲酸与标记苯甲酸的质量比;Wh为高浓度苯甲酸标准溶液中苯甲酸与标记苯甲酸的质量比;CIS上机样品溶液中标记苯甲酸的含量(mg/kg); K为橙汁样品的稀释倍数,按稀释成最终上机样品溶液的含量计算。
每瓶比对样品取样3次,按选定的方法进行样品的前处理和测定。分析时先以低浓度标准溶液、样品、高浓度标准溶液的次序进行一组测定,下一组时则以相反的次序进样,如此重复分析3次完成一瓶比对样品的分析。2瓶橙汁比对样品中苯甲酸的测定结果为(101.6±1.6) mg/kg (k=2)。
测定结果的不确定度的主要组成与HPLC-UV相同。
引入的原因与HPLC-UV相同,LC-IDMS的u1=0.56% 。
⑵配制标准溶液引入的不确定度u2。
包括GBW(E)100006 苯甲酸溶液标准物质的不确定度0.5% 、苯甲酸标准溶液第一次稀释引入的不确定度0.023% 、苯甲酸标准溶液第二次稀释引入的不确定度0.012% 和加内标后混合标准溶液配制引入的不确定度 0.0067% 。合成标准溶液不确定度 。
包括样品溶液第一次稀释引入的不确定度 0.0069% 、样品溶液第二次稀释引入的不确定度 0.0092%和样品中添加标记苯甲酸引入的不确定度 0.0067% 。合成样品溶液不确定度
将以上3项不确定分量合成,得到合成和扩展不确定度:合成相对标准不确定度
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相对扩展不确定度Urel=2×uIDMS=1.52%(k=2);扩展不确定度U=C×Urel=101.60×1.52%=1.55 mg/kg(k=2)。
两种方法合成标准不确定度;相对扩展不确定度Urel=2×u=1.98%(k=2);扩展不确定度U=C×Urel=102.04×1.98%=2.02 mg/kg(k=2)。
本实验室采取HPLC-UV和LC-IDMS两种方法测定结果的平均值作为比对样品中苯甲酸的含量测定值,对两种方法的标准不确定度进行合成,并进行扩展(k=2)。综上橙汁比对样品中苯甲酸的含量为(102.0±2.1) mg/kg(k=2)。
通过对HPLC-UV和LC-IDMS两种方法检测橙汁中苯甲酸所采用的流动相体系和溶剂体系的研究,建立了HPLC-UV和LC-IDMS分别检测橙汁中苯甲酸的方法。在HPLC-UV方法中着重考察了流动相体系的精确控制对样品分离和准确测定带来的影响,在LC-IDMS方法中着重考察了样品稀释溶剂对色谱和质谱行为的影响。在进行国际比对实验过程中充分考虑了可能影响测定准确度的各种因素,顺利完成了比对工作,并取得了较好的结果,说明本文建立的橙汁中苯甲酸的高效液相色谱分析方法准确可靠。此外,本文的方法和思路可以为饮料(果汁、茶饮料、汽水等)中其他极性食品添加剂(例如山梨酸、烃基安息香酸盐等)的分析检测提供借鉴和参考。