色谱  2014, Vol. 32 Issue (10): 1124-1130   PDF (986 KB)    
扩展功能
加入收藏夹
复制引文信息
加入引用管理器
Email Alert
RSS
本文作者相关文章
孙晓杰
郭萌萌
王苏玥
谭志军
李兆新
翟毓秀
分散固相萃取-在线凝胶色谱-气相色谱-质谱联用法快速检测紫菜中的农药多残留
孙晓杰 , 郭萌萌, 王苏玥, 谭志军, 李兆新, 翟毓秀     
中国水产科学研究院黄海水产研究所, 农业部水产品质量安全检测与评价重点实验室, 国家水产品质量监督检验中心, 山东 青岛 266071
摘要:建立了紫菜中农药多残留的在线凝胶色谱-气相色谱-质谱联用(GPC-GC/MS)检测方法。以有机氯、有机磷、三嗪类和菊酯类的19种农药为目标物,对比了丙酮、丙酮/二氯甲烷(1:1,v/v)和乙腈3种有机溶剂的提取效果,通过石墨化炭黑粉(GCB)和N-丙基乙二胺粉(PSA)分散固相萃取净化和GPC在线净化,气相色谱-质谱联用法分析,外标法定量。结果表明,此方法实现了在线净化与分析检测的自动化,缩短了分析时间。分析物在10~1000 μg/L范围内线性关系良好,相关系数r>0.995;采取GPC大体积进样和气相色谱进样口的程序升温方式提高了检测灵敏度,检出限为0.005~0.03 mg/kg。方法的平均添加回收率在70%~120%之间,相对标准偏差(RSD)均小于15%。该方法简单、快速、具有良好的回收率和重复性,适用于紫菜样品中农药多残留的快速灵敏检测。
关键词分散固相萃取     凝胶色谱-气相色谱-质谱     农药     紫菜     多残留    
Rapid determination of pesticide multiresidues in porphyra by dispersive solid-phase extraction coupled with online gel permeation chromatography-gas chromatography-mass spectrometry
SUN Xiaojie , GUO Mengmeng, WANG Suyue, TAN Zhijun, LI Zhaoxin, ZHAI Yuxiu     
Yellow Sea Fisheries Research Institute, Chinese Academy of Fishery Sciences; Key Laboratory of Testing and Evaluation for Aquatic Product Safety and Quality, Ministry of Agriculture; National Center for Quality Supervision and Test of Aquatic Products, Qingdao 266071, China
Abstract: A rapid method for the simultaneous identification and quantification of pesticide multiresidues in porphyra was developed using gel permeation chromatography (GPC) coupled to gas chromatography-mass spectrometry (GPC-GC/MS). Nineteen pesticides (organochlorines, organophosphoruses, triazines and pyrethroids) were selected as the target analytes. The pretreatment method was applied consisting of organic solvent extraction followed by dispersive solid-phase extraction with graphitized carbon black (GCB) and primary secondary amine (PSA) adsorbents. GPC was also employed online to remove the large molecules such as pigments and lipids. The quantitative analysis was carried out by external standard method using gas chromatography coupled with mass spectrometry in selective ion monitoring (SIM) mode. Moreover, a large volume of sample was allowed to be injected using the program of GPC programmed-temperature vaporizer of gas chromatography to improve the sensitivity of measurements. The results showed that the calibration curves were linear (r >0.995) in the range of 10-1000 μg/L for all the pesticides. The limits of detection (LODs) for the pesticides in porphyra were from 0.005 to 0.03 mg/kg, and the average recoveries were between 70% and 120%. The advantages of the method are simple, sensitive and shorter operation time for analysis of pesticide residues in porphyra samples.
Key words: dispersive solid-phase extraction     gel permeation chromatography-gas chromatography-mass spectrometry (GPC-GC/MS)     pesticides     porphyra     multiresidues    

紫菜多产自亚洲国家,是我国主要海洋经济藻类之一,我国是世界上紫菜第一大生产国和贸易国。紫菜富含矿物质、维生素、氨基酸、较多的不饱和脂肪酸且低油脂[1],其作为一种健康食品,现已被西方国家所接受,从而促进了海藻行业的快速发展。

在水产养殖行业中,农药常用来杀灭水产动物体外的寄生虫,同时陆地农业生产中广泛使用农药作为杀虫剂和除草剂,导致近海海域受到严重的污染[2]。以六六六、滴滴涕和硫丹等为代表的有机氯农药是较为有效的杀虫剂,早已列入斯德哥尔摩公约的优先控制范围[3]。而后发展起来的有机磷和菊酯类农药成为有机氯农药的替代品,但其高毒性同样给环境带来较大的危害[2]。另外,扑草净是农业生产中常用的除草剂[4]。这些化合物由于其较强的疏水性和持久性,容易被海藻类吸附,成为海洋环境中广泛分布的持久性有机污染物,影响紫菜等藻类生长,并可通过食物链的传递危及人类健康[5]。欧洲、美国、日本等发达地区和国家已通过农药限量对中国的紫菜实施贸易技术壁垒。因此,制定紫菜基质中农药多残留快速、灵敏的检测方法,对保护消费者的安全,促进紫菜产品的出口,并推动我国紫菜产业的可持续发展意义重大。

国内针对紫菜中农药的检测方法相对较少,检测的农药种类多限于一类或两类[6]。检测方法主要有GC-MS、GC-电子捕获检测器(ECD)和GC-火焰光度检测器(FPD)等,且部分方法的检出限接近于国家对食品中农药残留的最大限量[7]。因此,迫切需要开发紫菜中多类农药多残留快速、灵敏的检测方法。另外,食品等复杂基质中污染物的残留分析,通常需要大量而繁琐的分离净化和浓缩过程来降低基质效应[8],是目前研究的难点[9, 10]。农药检测中常用的净化方法有液液萃取、固相萃取、凝胶渗透色谱(GPC)和浓硫酸氧化去杂质等。其中液液萃取时有机溶剂消耗较大,同时目标物损失严重;固相萃取重复性差,费时耗力;浓硫酸氧化只适用于部分饱和农药组分的净化;常规的GPC以离线方式单独使用,存在净化时间长、有机溶剂消耗大、操作复杂等问题。而在线GPC-GC/MS实现了净化和分析检测的完全自动化,还可利用大体积进样、GPC优异的样品净化能力和气相色谱进样口的程序升温(LVI-PTV)方式大大提高测试的灵敏度和选择性。另外,依靠质谱强大的数据库软件可达到多类农药残留的筛查要求。

本文选用生产中常用且毒性较高的有机氯、有机磷、三嗪类和菊酯类共19种农药作为目标组分,紫菜样品经过简单的前处理(有机溶剂提取和分散固相萃取)后,使用在线GPC-GC/MS系统将色素、油脂等通过GPC柱进一步与农药分离,分析物进入GC/MS分析检测,实现了从样品前处理到分析检测的自动化,大大缩短了样品处理和检测所需要的时间。可对紫菜中的有机氯、有机磷、三嗪类和菊酯类农药多残留进行快速、灵敏的定性定量分析,为确保紫菜的食用安全提供了技术手段。

1 实验部分
1.1 试剂

农药标准品: α -六六六(纯度98.0% )、 β -六六六(纯度98.5% )、 γ -六六六(纯度98.6% )、 δ -六六六(纯度99.0% )、甲基对硫磷(纯度98.5% )、扑草净(纯度98.0% )、马拉硫磷(纯度99.0% )、对硫磷(纯度99.0% )、p,p′-滴滴伊(纯度97.5% )、p,p′-滴滴滴(纯度99.0% )、o,p′-滴滴涕(纯度98.5% )、p,p′-滴滴涕(纯度98.5% )、硫丹(纯度99.0% )、三唑磷(纯度81.0% )、氰戊菊酯(纯度98.0% )、溴氰菊酯(纯度99.5% ),均购自德国Dr. Ehrenstorfer公司。N-丙基乙二胺粉(PSA,40~60 μ m,美国Agilent公司);石墨化炭黑粉(GCB,40~60 μ m,上海安谱科学仪器有限公司);乙腈(农残级)、丙酮(农残级)、二氯甲烷(农残级)、环己烷(色谱纯)、无水硫酸镁(分析纯,使用前于650 ℃灼烧4 h)、氯化钠(分析纯)。干紫菜样品购于青岛市农副市场。

农药标准溶液的制备:分别称取经折算相当于10.0 mg的农药标准品;六六六、滴滴涕、硫丹、氰戊菊酯和溴氰菊酯用甲苯溶解,甲基对硫磷、对硫磷、马拉硫磷和三唑磷用甲醇溶解,扑草净用丙酮溶解;定容至10.0 mL,配成1.0 g/L 的标准储备液,于-20 ℃贮存。混合标准溶液用丙酮稀释配制。

1.2 仪器

Thermo SorvallBiofuge Primo型离心机(美国Thermo Fisher Scientific公司)、Talboys型旋涡混合器(上海安谱科学仪器有限公司),BT224S分析天平(法国Sartorius公司),N-EVAPTM112型氮气吹扫仪(美国Organomation公司),IS-RDS3型恒温振荡器(美国Crystall Technology & Industries公司)。

Shimadzu GPC-GC/MS 2010Ultra凝胶色谱-气相色谱-质谱联用仪(日本岛津公司)。GPC系统包括:LC-10Advp泵、SIL-10Advp自动进样器、CTO-10ASvp柱温箱、ShodexCLNpak EV-200凝胶色谱柱(200 mm×2.0 mm)、SPD-10Avp紫外检测器、流动通道选择阀、SCL-10Avp系统控制器。GC/MS系统包括岛津QP2010Ultra,配有PTV-2010大体积进样器;惰性毛细管柱(5 m×0.53 mm)、预柱Rtx-5ms (5 m×0.25 mm×0.25 μ m)和分析柱Rxi-5ms (25 m×0.25 mm×0.25 μ m),通过两通或三通串联使用,具体连接方式如图1所示。

图1 色谱柱的连接结构 Fig.1 Column configuration 1. deactivated capillary tube (5 m×0.53 mm); 2. press-tight connector; 3. Rtx-5ms (5 m×0.25 mm×0.25 μ m); 4. Y-glass seal connector; 5. Rtx-5ms (25 m×0.25 mm×0.25 μ m); 6. T-union; 7. quartz tube capillary (50 cm×0.04 mm).
1.3 实验方法
1.3.1 样品的提取和净化

前处理中采用分散固相萃取净化[11],参照水产动物源中农药的检测方法[12, 13, 14, 15, 16]。首先,将干紫菜样品用食品处理器粉碎,制成试样。取5 g(精确至0.01 g)试样于100 mL离心管中,由于样品含水较少,先加入10 mL蒸馏水浸泡约10 min,再加入40 mL乙腈,涡旋均匀后放入振荡器中以80 r/min 的速率振荡30 min,加入4 g氯化钠,振摇溶解后分层,随后再以 8000 r/min 的速率离心5 min,将上清液转移至已经加入50 mg PSA粉末、50 mg GCB粉末和150 mg无水硫酸镁的另一离心管中,涡旋2 min后静置20 min,其间摇晃几次,然后以 8000 r/min 离心5 min,上清液转入鸡心瓶中旋至近干,然后用1 mL流动相(丙酮-环己烷,3 ∶ 7,v/v)复溶,过0.22 μ m有机滤膜,待测。

1.3.2 GPC-气相色谱-质谱分析条件

GPC条件 流动相:丙酮-环己烷(3 ∶ 7,v/v);泵流速:0.1 mL/min;紫外检测波长:210 nm;总时间:10 min;进样量:20 μ L;柱温:40 ℃;色谱柱:ShodexCLNpak EV-200;农药残留馏分截取时间段:4.08~6.08 min;为防止管路残留,将农药推出后继续用载气吹扫0.1 min,将残液带入气相色谱。

GC条件 PTV进样口升温程序:120 ℃保持5 min,以100 ℃/min 升至250 ℃,保持33 min;进样模式:不分流进样;进样时间:7 min;载气:高纯氦气(He,纯度99.999% );柱温箱升温程序:82 ℃保持5 min,以8 ℃/min 升至280 ℃,保持13 min;柱流速控制:恒压120 MPa;载气总流速:30 mL/min。

MS条件 电子轰击(EI)源;检测模式:选择离子监测(SIM);离子源温度:200 ℃;接口温度:300 ℃;溶剂延迟时间:9.7 min;检测电压:相对于调谐结果为0 kV;扫描时间:12.0~40.0 min。

2 结果与讨论
2.1 提取剂的选择

本文考察了常用的丙酮、丙酮-二氯甲烷(1 ∶ 1,v/v)、乙腈3种溶剂的提取效果。对比研究发现,3种有机溶剂的提取效率都较好。在添加水平为50~100 μ g/kg 时,分析物的回收率为60% ~120% 。但是通过基质空白实验发现,丙酮的提取能力较强,样品中的色素等杂质在丙酮中溶解性较大;经丙酮和丙酮-二氯甲烷两种溶剂提取后,质谱图中的干扰较严重;而乙腈对脂肪和色素的溶解性较差,同时农药在乙腈中溶解性较好,提取之后得到的谱图干扰最少。因此选择乙腈作为样品提取剂可以在保证提取效率的同时减少杂质干扰。对乙腈的使用量也进行了优化,结果表明当乙腈量少于40 mL时,大部分农药组分的回收率较低;使用量达到40 mL时,所有组分回收率都大于70% ;继续增加乙腈的使用量,回收率没有明显增高。因此,为减少有机溶剂的使用,本实验选择乙腈用量为40 mL。

2.2 净化方法的优化

紫菜中含有较多的色素和其他营养成分及杂质,如果不能有效去除会对仪器造成污染,且杂质会影响对目标组分的准确定性和定量。比较C18和PSA的净化能力,结果见图2。PSA是不规则的硅胶颗粒,同时具有伯氨基和仲氨基,可以更好地去除样品中的碳水化合物、脂肪酸和酚类等杂质的影响,同时能准确地定性和定量,此技术已应用于蔬菜中农药残留的分析[17]。另外,由于GCB具有吸附能力,可以去除紫菜中大量色素和非极性杂质的干扰,本方法将乙腈提取液进一步用PSA和GCB净化。向提取液中同时加入PSA和GCB净化剂,并对使用量进行了优化。比较了10、30、50、100和200 mg的净化效果及回收率,表明当分散净化剂PSA和GCB的加入量都小于50 mg时,样品提取液较浑浊,且干扰峰多;当两种净化剂的加入量各为50 mg时,可有效去除紫菜提取液中的色素和脂类等杂质;当用量继续提高,由于净化剂对农药有一定的吸附作用,部分目标组分的回收率降低,净化效果没有进一步提高。为此,本试验选择分散净化剂PSA和GCB的用量各为50 mg。

图2 使用PSA和C18净化紫菜中的马拉硫磷和三唑磷 Fig.2 Cleaning-up of malathion and triazophos by PSA and C18 a. malathion by PSA; b. malathion by C18; c. triazophos by PSA; d. triazophos by C18.
表 1 10组农药的保留时间及定性、定量离子 Table 1 Retention times,quantitative and qualitative ions of ten groups of the pesticides
2.3 GPC在线净化

样品按照1.3.1节处理后,经GPC进一步净化。在GPC色谱柱中根据相对分子质量的不同,将油脂、色素成分与农药分离;在GPC软件上,由氟胺氰菊酯和灭螨蜢标准样品的保留时间来确定农药的收集开始和结束的时间;GPC仪器上设置了A、B两个切换阀,通过两阀的切换可有效截取含有农药残留部分的馏分,排出油脂、色素等杂质,农药被收集到定量捕集环(200 μ L)中,然后将收集好的溶液推入气相色谱的PTV进样口,同时启动GC/MS程序,实现了GPC净化和GC/MS检测的在线联用。

GPC-GC/MS系统的进样量为10 μ L,比单独的GC/MS高5~10倍,同时利用在线凝胶系统又进一步去除提取液中的干扰成分,因此能够提高灵敏度,获得更低的检出限。

2.4 GPC-GC/MS条件的优化

如表1所示,19种农药被分成了10组。由于市售农药中六六六(4种异构体)、滴滴涕(4种异构体)、硫丹(2种异构体)、氰戊菊酯(2种异构体)和溴氰菊酯(2种异构体)各自的异构体通常同时存在,将其异构体归为一组进行分析:六六六、滴滴涕和硫丹(10种农药归为3组),甲基对硫磷、马拉硫磷、对硫磷和三唑磷(4种农药归为4组),扑草净(1种农药归为1组),氰戊菊酯和溴氰菊酯(4种农药归为2组)。对1.0 mg/L 的农药混合标准溶液进行全扫描得到总离子流图,根据各农药的CAS号在质谱库中进行检索,查看标准质谱图,选择丰度相对较高、相对分子质量较大和干扰较少的碎片离子作为定性和定量的特征目标离子,根据实际质谱图确定各组分的保留时间(见表1),创建选择离子扫描方法。根据定量目标离子的峰面积,采用外标法定量。GPC净化所需时间为10 min,从图3可以看出,19种农药在GC/MS上分析所需时间不到40 min,GPC-GC/MS在线联用分析1个样品仅需50 min,实现了从试样进一步净化到分析检测的自动化,大大缩短了样品检测所需要的时间。且自动化的使用减少了人为操作的误差,重现性更好;因减少了有机溶剂的使用而降低了对人体和环境的危害。

表1 10组农药的保留时间及定性、定量离子 Table 1 Retention times,quantitative and qualitative ions of ten groups of the pesticides

图3 农药混合标准溶液的总离子流图 Fig.3 Total ion chromatogram of standard solution of mixed pesticides 1. α -HCH; 2. β -HCH; 3. γ -HCH; 4. δ -HCH; 5. methyl parathion; 6. prometryn; 7. malathion; 8. parathion; 9. α -endosulfan; 10. p,p′-DDE; 11. β -endosulfan; 12. p,p′-DDD; 13. o,p′-DDT; 14. triazophos; 15. p,p′-DDT; 16. fenvalerate-1; 17. fenvalerate-2; 18. deltamethrin-1; 19. deltamethrin-2.
2.5 线性范围和检出限

用丙酮稀释,配制10~1000 μ g/L 系列质量浓度的混合标准溶液。混合标准溶液中的各组分以定量目标离子的峰面积与质量浓度作标准曲线。从表2可以看出,10组农药在10~1000 μ g/L 范围内呈较好的线性关系,相关系数(r)均大于0.995。此方法的检出限(LOD,以3倍信噪比计)为0.005~0.03 mg/kg,与文献[6, 18, 19]报道的结果相当。参照2014年8月公布的国家标准[7],检出限均低于食品中农药的最大残留限量,说明此方法已达到了国家限量检出要求。

表2 10组农药的相关系数和检出限 Table 2 Correlation coefficients (r) and LODs of the 10 groups of the pesticides
2.6 回收率和精密度

挑选出阴性的紫菜作为空白样品基质,分别在50、100及200 μ g/kg 共3个水平进行农药加标试验,每个水平设置6个加标平行样,结果如表3所示。分析紫菜中每组农药(异构体合并计算)的添加回收率和相对标准偏差(RSD)可知,有机氯农药的平均回收率在73.2% ~94.4%之间,RSD为4.05% ~8.43% ;有机磷农药的平均回收率在81.4% ~112.6%之间,RSD为3.02% ~8.72% ;三嗪类农药的平均回收率在75.2% ~93.9%之间,RSD为5.45% ~6.79% ;菊酯类农药的平均回收率在89.6% ~112.1%之间,RSD为7.78% ~11.2% 。另外,连续3天对100 μ g/kg 的加标样品重复测试,RSD均小于15% 。说明该方法具有较好的日内和日间重复性;同时,方法简单、快速,回收率和精密度均能满足紫菜样品中农药多残留快速检测的要求。

表3 加标样品的回收率和精密度(n=6) Table 3 Recoveries and precisions of spiked samples (n=6)
2.7 实际样品检测

取市售的12个紫菜样品,按1.3.1节的实验方法进行提取、净化和色谱-质谱测定,其中扑草净在7个样品中有不同程度的检出,含量范围为0.007~0.058 mg/kg;三唑磷在8个样品中有不同程度的检出,含量范围为0.044~0.184 mg/kg;其他农药组分在所有样品中均未检出。图4为一个实际样品的总离子流图。

图4 实际样品的总离子流图 Fig.4 Total ion chromatogram of a real sample Peaks
3 结论

本研究采用GCB和PSA分散固相萃取净化结合在线GPC-GC/MS,建立了紫菜中有机氯、有机磷、三嗪类和菊酯类农药多残留的检测方法。利用GPC大体积进样的能力、优异的样品净化能力和气相色谱进样口的程序升温方式,可大大提高测试的灵敏度和选择性。同时,实现了从试样的进一步提纯到样品的分析检测完全自动化,节省人力消耗,且GPC的使用进一步减少了有机溶剂的使用量,降低了对人体和环境的危害。该方法简单、快速,方法的检出限、回收率和重复性均能满足紫菜中农药多残留定性定量检测的要求。

参考文献
[1]Bocanegra A, Bastida S, Benedí J, et al. Med J Food, 2009, 12(2): 236  
[2]Sun X, Zhu F, Xi J, et al. Mar Pollut Bull, 2011, 63: 102  
[3]Wang Y W, Cai Y Q, Jiang G B. Scientia Sinica Chimica (王亚韡, 蔡亚岐, 江桂斌. 中国科学: 化学), 2010, 40(2): 99
[4]Yu S, Huang K J, Yu M, et al. Chinese Journal of Analytical Chemistry (余晟, 黄克靖, 余萌, 等. 分析化学), 2012, 40(7): 1065
[5]Dhargalkar V K, Verlecar X N. Aquaculture, 2009, 287(3/4): 229
[6] GB 18629-2002
[7] GB 2763-2014
[8]Carvalho F P, Villeneuve J P, Cattini C. TrAC-Trend Anal Chem, 1999, 18(11): 656  
[9]García-López M, Canosa P, Rodríguez I. Anal Bioanal Chem, 2008, 391(3): 963  
[10]Lai Y, Chen H X, Lin R, et al. Chemical Journal of Chinese Universities (赖莺, 陈和秀, 林睿, 等. 高等学校化学学报), 2011, 32(10): 2286
[11]Michelangelo A, Steven J L, Darinka S. J AOAC Int, 2003, 86(2): 412
[12]Payá P, Anastassiades M, Mack D. Anal Bioanal Chem, 2007, 389(6): 1697  
[13]Schenck F J, Hobbs J E. Bull Environ Contam Toxicol, 2004, 73(1): 24
[14]Cunha C S, Lehotay J S, Mastovska K, et al. J Sep Sci, 2007, 30(4): 620  
[15]Li S J, Dong M, Xu H, et al. Chinese Journal of Chromatography (李淑静, 董梅, 许泓, 等. 色谱), 2014, 32(2): 157
[16]Lee S J, Park H J, Kim W, et al. Biomed Chromatogr, 2009, 23(4): 434  
[17]Xu P J, Gao X S, Tao B, et al. Chinese Journal of Analytical Chemistry (许鹏军, 高晓莎, 陶晡, 等. 分析化学), 2008, 36(11): 1515
[18]Wu Y, Kang Q H, Gao K Y, et al. Chinese Journal of Analytical Chemistry (吴岩, 康庆贺, 高凯扬, 等. 分析化学), 2009, 37(5): 753
[19]Kang Q H, Wu Y, Gao K Y, et al. Chinese Journal of Chromatography (康庆贺, 吴岩, 高凯扬, 等. 色谱), 2009, 27(2): 181