一氯三嗪-β-环糊精(分析纯,南京都莱生物技术有限公司); 1,2-双(三乙氧基硅基)乙烷(分析纯,美国Gelest公司);氨丙基三乙氧基硅烷(分析纯,武汉天目科技发展有限责任公司);十六烷基三甲基溴化铵和氢氧化钠(分析纯,中国医药集团上海化学试剂公司); 2-苯基-1-丙醇和1-苯乙醇和普萘洛尔(分析纯,美国Sigma-Aldrich公司);甲磺酸帕苏沙星和甲磺酸氧氟沙星(分析纯,百灵威试剂公司);甲醇(MeOH)和乙腈(ACN)(色谱纯,山东禹王实业有限公司);三乙胺和醋酸(分析纯,天津化学试剂二厂)。

高效液相色谱系统(包括Waters公司515泵、2487 检测器，Rheodyne公司7725i手动进样器，Millennium³²软件); Vairo元素分析仪(德国Elementar公司); IFS120HR傅里叶变换红外光谱仪(德国Bruker公司); 95551U装柱机(美国Alltech公司);不锈钢色谱柱管(150 mm×4.6 mm,天津三维色谱仪器配件厂); ASAP 2010快速比表面积/孔隙分析仪(美国Micromeritics公司); JSM-5601LV扫描电子显微镜(日本电子株式会社); TF20场发射透射电子显微镜(美国FEI公司); Milli-Q Integral超纯水处理系统(美国Millipore公司)。

β-环糊精/硅基杂化球的具体制备过程如图 1所示。将一氯三嗪-β-环糊精1.87 g和氨丙基三乙氧基硅烷0.78 mL置于20 mL水中,再加入0.1 g NaHCO₃,在40 ℃水浴中磁力搅拌30 min。加入80 mL乙醇,使沉淀析出。抽滤,乙醇洗涤,真空干燥,即可得到 β-环糊精硅基衍生物。

图1

Fig. 1

图1 β -环糊精/硅基杂化手性固定相的制备过程 Fig.1

取 β-环糊精硅基衍生物1.8 g加入到含有22 mL水、7 mL乙醇、1.1 g十六烷基三甲基溴化铵和0.48 g氢氧化钠的混合溶液中,搅拌均匀。再将1,2-双(三乙氧基硅基)乙烷1.6 mL分散于3 mL乙醇中,加入上述溶液中,室温搅拌反应30 min。将溶液转移到高压反应釜中,80 ℃下反应16 h。过滤收集白色沉淀,用大量乙醇洗涤,80 ℃下干燥,得到白色粉末状产物。再将1 g产物加入到200 mL含有1%(体积分数)浓盐酸的乙醇溶液中,50 ℃下搅拌6 h,去除模板剂,过滤,依次用大量水和乙醇洗涤,50 ℃下真空干燥6 h,即可得到 β-环糊精/硅基杂化手性固定相。

以异丙醇为匀浆液,以甲醇为顶替液,在45 MPa的压力下,将固定相填充到不锈钢柱管中,即可制得 β-环糊精/硅基杂化手性色谱柱。

色谱柱死时间(t₀)由丙酮测定^[16];保留因子(k)按k₁=(t₁－t₀)/t₀,k₂=(t₂－t₀)/t₀计算,t₁和t₂分别为两个洗脱峰的出峰时间;分离因子 α =k₂/k₁;分离度R_s=1.18(t₁－t₀)/(w_t1+w_t2),w_t1和w_t2分别为两个洗脱峰的半峰宽。

流动相以一定体积的乙腈/甲醇/三乙胺与醋酸缓冲盐(TEAA)配制(见表 1),流速为0.6 mL/min;流动相均经超声波脱气后使用,每次更换流动相时要充分平衡色谱柱,所有的色谱分离均在室温下进行。样品使用流动相进行溶解,每次进样10 μ L。检测器为紫外检测器,检测波长为250～280 nm。

表1

Table 1

表1(Table 1)

表1 β -环糊精/硅基杂化手性固定相的手性分离 Table 1 Chiral separations using β -CD/SiO2 hybrid chiral stationary phase Chiral compound k1 k2 α Rs Mobile phase 2-Phenyl-1-propanol 1.31 1.82 1.39 1.41 Ⅰ 1-Phenethyl alcohol 0.69 1.50 2.19 1.24 Ⅱ Propranolol 0.75 1.49 2.00 1.40 Ⅰ Pazufloxacin 0.65 1.11 1.69 1.34 Ⅰ Ofloxacin 0.71 1.24 1.75 1.30 Ⅰ k1: retention factor 1; k2: retention factor 2; α : separation factor; Rs: chromatographic resolution. Mobile phase: Ⅰ, acetonitrile-1 % triethylammonium acetate (TEAA) (20 ∶ 80, v/v); Ⅱ, methanol-1%TEAA (35 ∶ 65, v/v).

表1 β -环糊精/硅基杂化手性固定相的手性分离 Table 1 Chiral separations using β -CD/SiO2 hybrid chiral stationary phase

使用有机-无机杂化制备技术,通过两步化学反应制备了 β-环糊精/硅基杂化材料。在制备过程中,乙烷功能基团分布于杂化材料的孔壁骨架中,而 β-环糊精功能基团被模板剂包埋在孔道中,在脱除模板剂后,β-环糊精功能基团则留在孔道中,制备了具有介孔孔道的 β-环糊精/硅基杂化手性固定相。本文制备的 β-环糊精/硅基杂化手性固定相,不涉及环糊精衍生物的复杂合成反应和硅胶键合反应,β-环糊精功能基团在孔道中分布均匀,且负载量高于普通键合的手性固定相,不受硅胶表面硅羟基数量的限制,通过简单调节 β-环糊精功能基团的比例可制备出不同负载量的 β-环糊精/硅基杂化手性固定相。本方法制备过程简单、高效、成本低。

由红外光谱图(图 2)可以看出,在580 cm^-1附近的 C-Cl 键的特征峰明显减小,1646～1415 cm^-1处为三嗪环的振动特征峰,697 cm^-1和 1033 cm^-1处为 Si-O 键的红外振动特征峰,2925 cm^-1处为 C-H 键的伸缩振动特征峰,1168 cm^-1处为 C-O 键的伸缩振动特征峰,3361 cm^-1处为环糊精羟基振动特征峰。红外光谱表明 β-环糊精硅基衍生物制备成功。

图2

Fig. 2

图2 β-环糊精硅基衍生物的红外光谱图 Fig.2 Infrared spectrum of β -cyclodextrin-silica derivative

扫描电镜图(图 3a)显示本文制备的 β-环糊精/硅基杂化硅球的球形形貌规则,单分散性良好,硅球表面光滑,粒径为5～8 μ m。

图3

Fig. 3

图3 β-环糊精/硅基杂化手性固定相的(a)扫描电镜图、 (b)高分辨率透射电镜图及(c)氮气吸附等温线和孔径分布图 Fig.3 (a) Scanning electron microscope micrograph, (b) high resolution transmission electron microscope micrograph and (c) nitrogen sorption-desorption isotherms and the pore size distribution of β -cyclodextrin/silica-based hybrid chiral stationary phase

常规的色谱分离材料都具有良好的介孔孔道结构,本文制备的 β-环糊精/硅基杂化硅球孔道结构的高分辨透射电镜图如图 3b所示,硅球的边缘具有蠕虫状的孔道结构,孔道直径为2～4 nm。这些孔道可提高传质及增大吸附容量,有利于增强色谱材料的手性识别与分离。

图 3c给出了 β-环糊精/硅基杂化硅球的氮气吸附与解吸等温线和孔径分布图。从比表面孔度分析来看,制备的杂化硅球填料显示了典型的Ⅳ类吸附等温线和H1型滞后回线。Ⅳ类吸附等温线表明颗粒均匀,孔结构规则有序,孔径范围窄。H1型滞后回线表示孔结构为筒状中空结构,有利于样品分子的自由扩散。氮气吸附和脱附量p/p₀在0.4至0.7间逐渐增大。从孔径分布图可看出大多数孔径在3.2 nm左右,与透射电镜得到的孔径数据基本吻合。氮气吸附脱附BET(Brunauer Emmett Teller)法测得的比表面积为816 m²/g,具有高的比表面积。

由图 4a可知制备的 β-环糊精/硅基杂化手性固定相的红外光谱中出现了 2922 cm^-1及 2887 cm^-1处的吸收峰,是骨架中1,2-亚乙基和环糊精中亚甲
基的红外谱带。在693、919和 1040 cm^-1处的吸收峰对应于 Si-O 键的红外振动特征峰,说明杂化材料中有硅烷基的存在。在 3465 cm^-1处为羟基的伸缩振动特征峰,在 1643～1412 cm^-1处为三嗪环的振动特征吸收峰,在 1165 cm^-1和 1105 cm^-1处为 C-O 键的伸缩振动特征峰,这表明了 β-环糊精功能基团的存在。图 4b为 β-环糊精/硅基杂化手性固定相的光电子能谱图,可以看到硅球材料具有C、N、O和Si 4种主要元素,进一步证明了本文制备的有机-无机杂化硅球材料成功地负载了 β-环糊精功能基团。

图4

Fig. 4

图4 β-环糊精/硅基杂化手性固定相的(a)红外光谱图 和(b)光电子能谱图 Fig.4 (a) Infrared spectrogram and (b) X-ray photoelectron spectroscopy of β -cyclodextrin/silica-based hybrid chiral stationary phase

利用元素分析仪测得制备的 β-环糊精/硅基杂化硅球的碳含量是17.33% ,氮含量是0.75% ,氢含量为3.99% 。根据已经报道的键合量计算公式^[17],由氮元素的含量可以计算出 β-环糊精负载量为0.23 μ mol/m²,并且本文制备的杂化硅球中 β-环糊精的负载量明显高于传统的键合方法制备的环糊精手性固定相^{[18, 19]}。

在手性色谱分离中,缓冲液对取得理想的分离效果至关重要。流动相中加入缓冲液,一方面可以抑制溶质分子的离子化,改善其在色谱柱上的保留和选择性;另一方面也可以掩蔽或修饰色谱柱填料的极性基团,使色谱峰变得更规则,提高分离能力。缓冲液pH值的改变影响溶质分子功能基团与环糊精的相互作用或形成氢键的能力。本文考察了流动相中TEAA的体积分数及pH值对手性化合物拆分的影响。如图 5所示,随着TEAA体积分数从0.1%升高到1%,保留时间减小,分离度增加,可能是因为浓度高的TEAA与环糊精形成氢键,从而使包合物的稳定性降低。随着pH值的增大,多数化合物的分离度降低。本实验选择pH值为4,TEAA体积分数为1% 。

图5

Fig. 5

图5 (a)流动相中TEAA 体积分数和(b)pH对手性 拆分的影响 Fig.5 Effects of (a) TEAA volume percentage and (b) pH value in mobile phase on the enantioseparations

由于环糊精本身的结构特点,其手性分子识别能力显著,被广泛地用于对映体的拆分。在环糊精分子中,糖单元都采用椅式构象,并且形成中空的圆锥体结构,水溶性和非水溶性化合物都能进入空穴形成包合物。客体分子能够全部或部分进入环糊精的空腔,主要通过客体与手性空腔的匹配作用进行手性识别和拆分分离,而苯环类化合物能够和环糊精的空腔进行很好的匹配,因此环糊精类手性固定相多用来分离带苯环的手性化合物。本文制备的 β-环糊精/硅基杂化硅球材料用于色谱柱填料,在反相色谱条件下,采用乙腈/甲醇/TEAA作流动相,对2-苯基-1-丙醇、1-苯乙醇、普萘洛尔、甲磺酸帕苏沙星和甲磺酸氧氟沙星手性化合物进行拆分。对映体拆分色谱图如图 6所示,5种手性化合物实现了基线分离。其色谱分离数据如表 1所示,所拆分手性化合物的分离度都大于1,特别是2-苯基-1-丙醇的分离度为1.41,表明本文制备的孔道中负载 β-环糊精杂化手性固定相具有很好的手性识别与拆分能力。主要归因于两方面:一方面,β-环糊精/硅基杂化硅球材料骨架的孔壁含有大量的亚乙基,在色谱分离过程中提供良好的疏水作用,在环糊精疏水性穴腔的包结作用过程中以协同作用的方式增强手性分离;另一方面,β-环糊精/硅基杂化硅球材料在孔道中的环糊精易裸露在流动相中,能与流动相中的溶质分子进行有效的手性识别作用。

图6

Fig. 6

图6 手性化合物的拆分色谱图 Fig.6 Chromatograms of the enantioseparation of the chiral compounds

与3,5-二甲基苯基衍生化的 β-环糊精/硅基杂化手性固定相的拆分^[15]比较,本文制备的手性固定相对2-苯基-1-丙醇、1-苯乙醇和普萘洛尔也实现了对映体拆分,但分离度有所降低,表明环糊精分子中的羟基被3,5-二甲基苯基衍生后有利于增强固定相的手性拆分能力。本文制备的杂化手性固定相对帕苏沙星和氧氟沙星具有较好的手性识别能力,表明在反相色谱条件下,未衍生的环糊精在外亲水和内疏水的包结作用下,容易识别这两种手性化合物。

本文合成了 β-环糊精硅基衍生物,以十六烷基三甲基溴化铵为模板,在碱性条件下,β-环糊精硅基衍生物和1,2-双(三乙氧基硅基)乙烷发生聚合反应,制备了 β-环糊精/硅基杂化硅球,利用红外光谱、扫描电镜、透射电镜、氮气吸附-脱附和元素分析等手段对其进行了表征,证明 β-环糊精/硅基杂化硅球手性固定相制备成功。在没有对环糊精羟基进行衍生的情况下研究了其反相色谱手性分离性能,结果表明在手性物质分离过程中,其与流动相pH值及TEAA含量有较大关系；手性固定相对5种手性化合物实现了基线分离,表现出了较好的手性识别和拆分能力,在手性药物拆分方面具有较大的应用潜力。