1290超高效液相色谱仪(美国Agilent公司); ZORBAX RRHD色谱柱 (50 mm×2.1 mm,1.8 μ m,美国Agilent公司); API4000三重四极杆质谱仪(美国AB公司);涡旋振荡器(美国Thermo Scientific公司); AE100电子分析天平(瑞士Mettler Toledo公司); TGL-15B型高速台式离心机(上海安亭科学仪器厂); N-EVAP型氮吹仪(美国Organomation公司)。

金刚烷胺、金刚乙胺(纯度≥97% ,美国Sigma公司);氨水(分析纯,含量25% ～28% ,国药集团化学试剂上海有限公司);甲醇、乙腈(色谱纯,德国Merck公司);甲酸、乙酸(色谱纯,美国Sigma公司);无水MgSO₄(分析纯,国药集团化学试剂北京有限公司);纯净水(杭州娃哈哈公司); ProElut C18、PSA、NH₂、Florisil填料(50 μ m,中国迪马科技)。

分别称取适量的金刚烷胺和金刚乙胺标准物质,用乙腈稀释成 1 000 mg/L 的标准储备液。再分别准确吸取1 mL标准储备液于容量瓶中,用乙腈定容至25 mL,得到40 mg/L 的金刚烷胺和金刚乙胺混合标准溶液,低温下避光保存。

氨水-乙腈(2 ∶ 98,v/v)溶液:取2 mL氨水于100 mL容量瓶中,用乙腈定容至100 mL,混匀,现配现用。

鸡蛋样品去壳后用组织捣碎机搅拌混匀(鸡肉样品去毛、去皮后用组织捣碎机搅拌混匀),称取2 g(精确至0.01 g)鸡蛋或鸡肉样品于50 mL离心管中,加入10.0 mL氨水-乙腈(2 ∶ 98,v/v)溶液,涡旋提取3 min,5 000 r/min 下离心5 min后将上清液转移至10 mL刻度试管中,氮吹仪吹至1 mL,分别加入20 mg C18填料、30 mg NH₂填料和150 mg无水MgSO₄,涡旋提取15 s,混合液过0.22 μ m滤膜,待分析。

流动相A为甲醇,B为1 mmol/L 乙酸铵水溶液(含0.1%(v/v)甲酸);流速:0.2 mL/min;柱温:35 ℃;进样量:1 μ L;梯度洗脱程序:0.00～3.00 min,20%A～95%A; 3.00～4.00 min,95%A; 4.00～4.20 min,95%A～20%A; 4.20～6.00 min,20%A。

离子源:ESI源;扫描方式:正离子扫描;GS1 55 L/min,GS2 55 L/min,气帘气20 L/min;辅助加热气温度650 ℃,喷雾电压 5 500 V;监测模式:MRM。

文献中对于金刚烷胺和金刚乙胺的检测离子对的报道已经较多,但是不同质谱仪的结构及设计不同,相关的电压各不相同。在质谱分析中,对于化合物的电离影响较大的主要包括了去簇电压(DP)和碰撞电压(CE)。当DP高时,化合物可能在源内分解或碎裂,且高的DP值会导致多电荷离子比例低,多聚体也减少;而当DP低时,母离子丰度相对提高,灵敏度也会相应提高,使得谱图简单。当CE过高时,会产生过多的碎片,使得二级质谱信息过多而复杂;当CE过低时,则会产生大碎片和母离子,使得二级质谱信息较少。因此,本实验中参照文献^[18]中的离子对,利用针泵进样,分别对DP和CE等进行了优化,优化后的离子对及其相关参数如表1所示,同时根据所得的离子对信息对金刚烷胺和金刚乙胺的断裂方式做了初步推断(见图2)。

表 1 (Table 1)

表 1 金刚烷胺和金刚乙胺的相关质谱参数 Table 1 MS parameters of amantadine and rimantadine Compound Retention time/min Precursor ion (m/z) Product ion (m/z) Declustering potential/V Collision energy/V Amantadine 2.42 152.2 135.3*/79.0 66.0 22.0/18.0 Rimantadine 3.06 180.1 163.4*/93.1 80.0 25.0/40.0 * Quantitative ion.

表 1 金刚烷胺和金刚乙胺的相关质谱参数 Table 1 MS parameters of amantadine and rimantadine

图 2

Fig. 2

图 2 金刚烷胺和金刚乙胺可能的断裂方式 Fig. 2 Possible fragmentation patterns of amantadine and rimantadine

金刚烷胺和金刚乙胺中都带有一个氨基,呈现出一定的碱性,本研究中首先采用了常用的乙腈-水溶液作为色谱的流动相,但结果表明,金刚烷胺和金刚乙胺在C18色谱柱上峰形较差,拖尾严重,基线噪声较大,图3a为乙腈-水溶液作为流动相的色谱图;当在水相中加入了0.1%(v/v)的甲酸后,金刚烷胺和金刚乙胺在C18色谱柱上峰形较好、无拖尾现象,且基线噪声明显降低,图3b为乙腈-0.1%(v/v)甲酸水溶液作为流动相的色谱图,推测甲酸的加入能够在一定程度上中和氨基的碱性,从而提高其在C18柱上的保留行为;另一方面,在正离子模式下,乙酸铵的加入可抑制目标化合物[M+Na]⁺峰的形成,从而促进[M+H]⁺峰的形成,在进行子离子碎片扫描时可以得到较强的碎片;同时乙酸铵的加入还能够调节溶液的离子强度,使色谱峰形更对称,也提高了化合物的响应。因此,本研究在水相中加入了1 mmol/L 的乙酸铵,金刚烷胺和金刚乙胺都达到了较好的响应值。

图 3

Fig. 3

图 3 金刚烷胺和金刚乙胺在不同流动相中的色谱图 Fig. 3 Chromatograms of amantadine and rimantadine in different mobile phases a. acetonitrile-water; b. acetonitrile-0.1%(v/v) formic acid.

实验中还比较了甲醇和乙腈作为流动相的色谱峰形,结果表明,采用甲醇作为流动相时,对于金刚乙胺的影响不大,但是可以明显地改善金刚烷胺的峰形,使其由原来的宽峰变为对称的尖峰,如图4所示。因此实验最终选择了1.4节的流动相条件。

图 4

Fig. 4

图 4 金刚烷胺和金刚乙胺在甲醇和乙腈中的色谱图 Fig. 4 Chromatograms of amantadine and rimantadine in methanol and acetonitrile a. amantadine in acetonitrile; b. rimantadine in acetonitrile; c. amantadine in methanol; d. rimantadine in methanol.

本研究选择鸡蛋作为实验对象,首先比较了纯乙腈、甲酸-乙腈(1 ∶ 99,v/v)、乙酸-乙腈(1 ∶ 99,v/v)和氨水-乙腈(1 ∶ 99,v/v)对于金刚烷胺和金刚乙胺的提取效果,结果表明氨水-乙腈(1 ∶ 99,v/v)溶液对于两种化合物的提取效果最好,平均提取率分别达到了103%和92% ,比其他提取溶液的提取率高,原因可能为金刚烷胺和金刚乙胺的化学结构中都带有氨基,呈现出一定的碱性,氨水-乙腈的碱性环境可抑制金刚烷胺和金刚乙胺的电离,使得目标化合物在乙腈中的分配系数增加,从而提高了提取效率。

其次,比较了氨水-乙腈(0.5 ∶ 99.5,v/v)、氨水-乙腈(1 ∶ 99,v/v)、氨水-乙腈(2 ∶ 98,v/v)和氨水-乙腈(4 ∶ 96,v/v)对于金刚烷胺和金刚乙胺的提取效果,如图5所示,氨水-乙腈(2 ∶ 98,v/v)和氨水-乙腈(4 ∶ 96,v/v)溶液具有较好的提取效果,由于氨水的挥发性较大,且刺激性较强,不利于实验操作者的身体健康,因此,选择氨水-乙腈(2 ∶ 98,v/v)溶液作为提取溶液。

图 5

Fig. 5

图 5 氨水与乙腈的体积比对金刚烷胺和金刚乙胺提取率的影响 Fig. 5 Effect of volume ratio of ammonium hydroxide and acetonitrile on extraction rate for amantadine and rimantadine

在本实验中,首先考察了将提取溶液浓缩后直接进样分析的效果,结果表明,金刚烷胺和金刚乙胺的平均回收率均大于130% ,可能存在一定的基质增强效应,同时经浓缩后的提取溶液颜色较深,且含有少量的脂肪和蛋白质等干扰物质,不利于质谱分析。因此,本实验中选择在浓缩后的提取溶液中加入净化填料,以期得到较好的净化效果。

在农兽药残留分析中,常用的净化填料主要有C18、Florisil、NH₂和PSA等,本研究中比较了上述4种填料对于金刚烷胺和金刚乙胺的净化效果。分别在1 mL的浓缩提取液中加入50 mg填料和150 mg无水MgSO₄,结果表明,4种填料的加入都能够使金刚烷胺和金刚乙胺的提取率保持在70% ～110%之间,都能够满足净化的要求;而通过提取率的比较可知,C18和NH₂填料对于金刚烷胺和金刚乙胺的净化效果较好,提取率都在100%左右,可以对提取溶液
中的杂质等干扰物质进行有效的吸附,且对于目标化合物的吸附较小;而Florisil和PSA填料相对于C18和NH₂填料的提取率稍差,对于金刚烷胺和金刚乙胺具有一定程度的吸附,影响了提取效率。因此,选择C18和NH₂的混合填料作为本实验的净化填料。

另一方面,本实验以C18和NH₂作为混合净化填料进行实验,在1 mL浓缩提取液中加入150 mg无水MgSO₄,并加入50 mg C18和NH₂的混合填料,比较了C18和NH₂的质量比分别为1 ∶ 4、2 ∶ 3、1 ∶ 1、3 ∶ 2、4 ∶ 1时对于金刚烷胺和金刚乙胺的净化效果,如图6所示,对于金刚烷胺,当C18和NH₂的质量比为1 ∶ 4、2 ∶ 3和1 ∶ 1时,提取效果较好,而当C18和NH₂的质量比为2 ∶ 3和3 ∶ 2时,对于金刚乙胺的提取效果较好。因此,选择C18和NH₂的质量比为2 ∶ 3,对于两种化合物的提取效果都较好。

将金刚烷胺和金刚乙胺的标准溶液稀释成不同
的浓度,以定量离子的峰面积对其各自的浓度进行线性回归;同时利用鸡蛋空白基质进行检出限和定量限的考察,以3倍和10倍信噪比来确定金刚烷胺和金刚乙胺的检出限和定量限。如表2所示,金刚烷胺和金刚乙胺的相关系数(R²)较好,检出限较低,能够满足兽药残留的测定要求。

图 6

Fig. 6

图 6 C18与NH2的质量比对金刚烷胺和金刚乙胺提取率的影响 Fig. 6 Effect of mass ratio of NH2 to C18 on the extraction rate for amantadine and rimantadine

表 2 (Table 2)

表 2 金刚烷胺和金刚乙胺的线性范围、线性方程、相关系数(R2)、检出限和定量限 Table 2 Linear ranges,linear equations,correlation coefficients (R2),limits of detection (LODs) and limits of quantitation (LOQs) of amantadine and rimantadine Compound Linear range/( μ g/L) Linear equation R2 LOD/( μ g/kg) LOQ/( μ g/kg) Amantadine 0.15-10 y=1.08×105x+2.85×105 0.9996 0.05 0.20 Rimantadine 0.15-10 y=1.87×105x+1.68×105 0.9994 0.05 0.20 y: peak area of quantitative ion; x: mass concentration,μ g/L.

表 2 金刚烷胺和金刚乙胺的线性范围、线性方程、相关系数(R2)、检出限和定量限 Table 2 Linear ranges,linear equations,correlation coefficients (R2),limits of detection (LODs) and limits of quantitation (LOQs) of amantadine and rimantadine

分别采用鸡蛋和鸡肉的空白基质,根据金刚烷胺和金刚乙胺的定量限,分别以1倍、5倍、10倍定量限作为添加浓度进行回收率试验,每个试验对象做6次平行试验,计算其平均回收率。通过表3可知,金刚烷胺和金刚乙胺的平均回收率范围为89% ～108% ,相对标准偏差范围为5.0% ～8.6% ,符合兽药残留测定的要求。

表 3 (Table 3)

表 3 金刚烷胺和金刚乙胺的加标回收率和相对标准偏差(n=6) Table 3 Spiked recoveries and relative standard deviations of amantadine and rimantadine (n=6) Compound Spiked level/ ( μ g/kg) Recoveries (RSDs)/% Chicken Egg Amantadine 0.2 95.4(7.9) 96.4(5.8) 1.0 96.6(6.3) 93.0(5.2) 2.0 93.2(6.7) 108.0(5.0) Rimantadine 0.2 88.7(7.5) 104.3(6.6) 1.0 95.5(8.6) 96.8(5.7) 2.0 94.5(5.4) 99.5(6.6)

表 3 金刚烷胺和金刚乙胺的加标回收率和相对标准偏差(n=6) Table 3 Spiked recoveries and relative standard deviations of amantadine and rimantadine (n=6)

本文建立了分散固相萃取-超高效液相色谱-串联质谱快速测定鸡蛋和鸡肉中金刚烷胺和金刚乙胺残留的方法。以氨水-乙腈(2 ∶ 98,v/v)作为提取溶液,C18和NH₂混合填料净化,采用优化后的MRM模式,外标法定量,能够快速完成鸡蛋和鸡肉中金刚烷胺和金刚乙胺的定性和定量分析,具有较好的准确度和精确度,适合鸡蛋和鸡肉中金刚烷胺和金刚乙胺的快速分析测定。