维生素B2又称核黄素, 是一种人体必需的水溶性维生素。在人体内主要以两种衍生物黄素单核苷酸(FMN)和黄素腺嘌呤二核苷酸(FAD)的形式存在, 作为重要的氧化还原酶的辅基参与生物氧化反应及糖、蛋白质等的代谢[1]。核黄素不能在人体内自合成, 只能从食物和外源性补充剂中摄取, 核黄素的缺乏将导致人和动物能量代谢受阻, 引起口角炎、舌炎、角膜血管增生等症状[2]。另外, 维生素B2作为一种维生素类药, 可用于辅助治疗高血压、冠心病等慢性病, 也可用于治疗放化疗所引起皮炎、黏膜炎等[3]。
维生素B2因其结构中含有异咯嗪环, 稳定性较差, 遇光容易分解[4], 很多研究都对维生素B2的光降解特性进行了研究, 测定了不同光照条件下维生素B2的含量变化[5, 6]。目前对于药物稳定性的研究, 包括维生素B2的光稳定性研究, 通常是在固定离子强度的情况下进行的。然而, 一系列研究表明, 离子强度对药物稳定性及光解反应的速率有较大的影响[7-9]。由于液体制剂会加入等渗调节剂等盐类物质, 因而在研究维生素B2的光解反应时, 不应仅仅考察在水溶液中的分解情况, 在盐溶液中的研究将有更实际的参考价值。考察维生素B2在不同离子强度条件下的光照稳定性, 首先需要建立维生素B2及降解产物的分析方法。目前, 维生素B2多采用紫外-可见分光光度法、高效液相色谱法、荧光比色法等[3, 10-12]。UV和HPLC的灵敏度欠佳, 荧光分光光度法灵敏度高, 但无法测定分解反应产生的有关物质。
加压毛细管电色谱(pressurized capillary electrochromatography, pCEC)是近年发展起来的一种新兴电动微分离技术, 它以内含色谱固定相的毛细管为分离柱, 利用电渗流结合压力流来推动流动相, 既可分离带电物质也可分离中性物质。具有高柱效、高选择性、高分辨度、快速分离、样品和试剂用量少的特点[13]。pCEC已广泛应用于药物分析[14]、食品检测[15]等领域。将具有高效分离能力的pCEC和高灵敏度的激光诱导荧光(laser-induced fluorescence, LIF)检测器联用[16], 可显著增加其对痕量物质的分析, 非常适合于维生素B2和其有关物质的测定[17]。
本研究将pCEC-LIF微分离平台应用于维生素B2及其荧光性分解产物的分离分析中, 建立分析维生素B2及有关物质的新方法, 同时将利用此平台考察维生素B2溶液光解反应的速率与离子强度之间的关系。
TriSep-2100型加压毛细管电色谱仪(美国Unimicro Technologies公司), 由激光诱导荧光检测器(型号Trisep-3000)、溶剂输送系统、微流控系统、高压电源及数据采集系统5部分组成; WD-A型药物稳定性检查仪(天津新天光分析仪器技术公司); Sartorius BT224S电子天平(北京赛多利斯仪器系统有限公司); KQ5200DE超声波清洗器(昆山超声仪器有限公司); Molcell 1805V摩尔细胞型纯水机(重庆摩尔水处理设备有限公司); F7000荧光分光光度计(日本Hitachi公司)。
维生素B2(vitamin B2, VB2, 批号K1622101, 含量98%)购自上海阿拉丁试剂有限公司; 光黄素(lumiflavin, 含量95%)购自加拿大Toronto Research Chemicals公司, 磷酸氢二钠(含量99%)购自上海凌峰化学试剂有限公司; 三氟乙酸(trifluoroacetic acid, TFA, 含量98%)和氯化钠(分析纯)购自国药集团化学试剂有限公司; 甲醇和乙腈(色谱纯)购自美国Tedia公司。
维生素B2对照储备液的配制:精密称取维生素B2 18.8 mg置于250 mL容量瓶中, 准确配制浓度为2.0×10-4 mol/L的储备液。
光黄素对照储备液的配制:精密称取光黄素12.8 mg置于250 mL容量瓶中, 准确配制浓度为2.0×10-4 mol/L的储备液。
维生素B2系列对照溶液的配制:用超纯水将上述对照储备液逐级稀释为0.25×10-4、0.50×10-4、1.0×10-4和1.5×10-4 mol/L的系列对照溶液。
缓冲液和不同离子强度溶液的配制:配制10、20和40 mmol/L磷酸盐缓冲液(phosphate buffer saline, PBS), pH为7.0, 并加入氯化钠分别调节其离子强度。
维生素B2/PBS的配制:将维生素B2溶于上述PBS缓冲液中, 现用现配。
以上含维生素B2的溶液均用锡箔纸包裹, 避光冷藏保存。
吸取2 mL的维生素B2/水溶液和维生素B2/PBS置于透明玻璃样品瓶中, 放入药物稳定性检查仪内, 控制检查仪的灯光强度为3 500 Lx, 温度保持在室温, 开启风扇。开始光照的时间记为t0, 在光照不同时间点取样, 样品避光冷藏保存。
发射光谱测量模式, 激发波长488 nm, 发射光谱波长测量范围:450~600 nm, 激发波长狭缝宽度5 nm, 发射波长狭缝宽度5 nm, 温度为室温。
色谱柱:毛细管色谱柱(150 mm×100 μm, 1.8 μm, C18);流动相A:水(含0.1%(v/v)三氟乙酸), 流动相B:乙腈(含0.1%(v/v)三氟乙酸), 梯度洗脱(0 min, 30%B; 0-15 min, 30%B上升至90%B; 15-20 min, 90%B), 总流速:0.05 mL/min; 柱温:室温; 分流比:1:600;进样量:3 nL; LIF激发波长:488 nm, 发射波长:520 nm。
维生素B2溶液为黄色, 自身发黄绿色荧光, 发生光解后, 溶液颜色整体变淡, 在离子强度大的溶液中褪色更加明显。通过荧光分光光度计分别测量维生素B2在水和20 mmol/L PBS(离子强度为0.5 mol/L)中光照0.5、1、1.5和2 h后的荧光光谱, 见图 1。结果显示, 维生素B2/水溶液和维生素B2/PBS在光照不同时间后, 荧光光谱形状并没有大的改变, 但荧光强度发生了改变。维生素B2/水溶液在488 nm处激发产生的荧光强度随光照时间有一定程度的下降, 但远低于其在PBS中的下降程度。由此说明离子强度对维生素B2光解反应有直接影响, 溶液中离子强度的增加, 将加快维生素B2光解反应的速率。
在图 1中看到, 维生素B2在水溶液和磷酸盐溶液中的荧光强度有不同程度的下降, 这个强度代表的是整个维生素B2反应体系中的总荧光强度, 即维生素B2和光降解产物的荧光强度的总和, 说明维生素B2的光解产物整体上在488 nm激发时产生的荧光强度不如维生素B2本身, 也可能是部分降解产物没有荧光信号导致。为了进一步研究维生素B2和光降解产物的变化, 我们需要建立有分离能力的分析方法。
pCEC-LIF系统中, 毛细管色谱柱的出口端连接负电极, 进口端接地, 电渗流与压力流方向一致。在毛细管色谱柱中, 样品根据各自的分配系数和电泳淌度的不同得到分离。将毛细管色谱柱的窗口直接安装于可变波长LIF中, 激光器发射出的488 nm激光由激发滤光片滤光后经二向色镜反射, 通过物镜聚焦到色谱柱窗口上, 激发被分离的待测物质产生荧光, 荧光通过物镜聚焦、滤光片过滤, 聚焦到光电倍增管(photomultiplier tube, PMT)前面狭缝处, 由PMT采集转化成电信号, 然后被信号采集单元转化成数字信号输出。
实验中首先考察了流动相梯度、施加电压等对维生素B2分析的影响。其中电压的影响如图 2所示。可看出, 随着电压的增加, 分离时间缩短。同时, 各个物质仍能得到良好的分离, 主峰维生素B2与右侧相邻杂质峰的分离度也随电压的增加而增加。其主要原因在于, 加压毛细管电色谱兼具HPLC和电泳的双重性质, 可通过改变电压来增加分离的选择性。图 2中, 由于毛细管中电渗流方向和外加电压方向一致, 随电压增加, 维生素B2等物质的保留时间缩短; 同时由于分离对象所带电荷不同, 电压对其电泳速度的影响不完全一样, 因而维生素B2与右侧相邻降解产物峰的分离度随着电压增加也有所增加, 体现了加压毛细管电色谱的双重分离机理。
在pCEC-LIF最优条件下, 维生素B2溶液的分离如图 3所示。可以看出, 维生素B2对照品(见图 3a)及光解产物光黄素对照品(见图 3b)均显示一个单一的色谱峰。随着光解反应的进行, 维生素B2在水溶液(见图 3c)和PBS(见图 3d)中均开始降解, 并有新的降解产物产生, 但降解峰的个数和强度有所不同。当光照24 h后, 维生素B2在水溶液(见图 3e)和盐溶液(见图 3f)中的色谱峰基本消失, 色谱图中仅存在降解产物的峰。在最优条件下, 维生素B2的多种带荧光的光解产物都得到了很好的分离, 说明我们建立的pCEC-LIF为维生素B2溶液的光降解产物研究提供了一个很好的分析平台。
本研究使用的是反相色谱柱。而维生素B2的结构如图 4a所示。可以看到, 在异咯嗪环的10号位N原子上所连接的基团上有4个极性较大的羟基, 在反相色谱中保留较弱。而降解产物光黄素如图 4b所示, 在其他结构基本不变的情况下, 其10号位N原子上的基团部分丢失, 虽然相对分子质量变小, 但是极性大的羟基也脱去了, 因而产物分子在相对分子质量减小同时, 极性亦减小, 保留增加, 符合RPLC的保留规律。
在pCEC-LIF上分别测定1.2节所述维生素B2系列对照溶液, 在该系列对照溶液的浓度范围内, 根据色谱图上的峰面积Y对浓度X(mol/L)绘制标准曲线, 得到回归方程Y=877201X-24602(r>0.999), 表明方法的线性关系良好。定量限可低至5×10-8 mol/L。连续进样6次, 计算得保留时间的RSD为2.1%, 峰面积的RSD为3.7%。
将维生素B2溶解在不同离子强度的PBS中, 在光照不同时间后取样, 基于建好的pCEC-LIF平台进行分析。
考察了不同浓度的缓冲液中, 维生素B2浓度随光照时间的变化(见图 5)。随着光照时间的增加, 维生素B2在所有溶液中的浓度都会逐渐降低, 但在水溶液中的降低程度最小, 且缓冲溶液的浓度越大, 维生素B2的降解越快。
固定光照时间为1 h, 考察了维生素B2的浓度随离子强度的变化(见图 6)。可以看出, 当缓冲液浓度不变时, 维生素B2的降解随离子强度的增加而加快。当离子强度相同时, 缓冲液浓度越大, 维生素B2的降解越快, 这可能是由于磷酸盐在溶液中形成的PO43-、HPO42-、H2PO4-中一种或多种离子对维生素B2降解反应的影响比Cl-大, 具体原因还需进一步探索。
维生素B2在水溶液中的光解遵从一级反应动力学[10]。故根据动力学方程, 维生素B2初始浓度c0与时间t时的浓度ct有以下关系:
其中k为表观反应速率常数。
按式(1), 基于pCEC-LIF求得维生素B2在不同离子强度溶液中的k, 如表 1所示。可看出, 磷酸盐浓度越高, 离子强度越大, 维生素B2光解反应的表观反应速率常数越大。
离子强度对溶液中化学反应的影响又称原盐效应。在药物制剂中, 往往加入等渗调节剂、抗氧化剂、pH调节剂, 而这些多为无机盐[18], 产生的离子强度可能会影响药物的降解速度, 影响的定量关系可由过渡态理论导出[19]。
离子强度对药物降解速度的影响符合下式[20]:
式中, ZA、ZB是反应物在溶液中所带电荷, μ是离子强度, k0是无限稀释下的反应速率常数。式(2)适用于μ较小的体系, 而在离子强度较大的溶液体系中, 式(2)可表示为:
式中β取决于离子的直径, 并通常可约等为1, 那么与log k应该呈线性关系。
图 7维生素B2在不同浓度PBS中的与log k的关系, 可看出与log k的确呈良好的线性关系, 且斜率为正值。由式(3)可知, 斜率为正表明ZAZB为正, 即维生素B2在该条件下的光解反应属于带相同电荷的离子之间的反应, 此时加入盐使溶液的离子强度增加, 则降解反应速率增加, 这也从理论上证实了本实验的结果。
本研究基于pCEC-LIF平台, 建立了维生素B2及其荧光性分解产物的分析方法, 实现了维生素B2及多种光降解产物的分析。用该联用系统研究了维生素B2在水溶液和PBS中的光解反应速率与离子强度之间的关系。发现维生素B2溶液的光解速率与磷酸盐浓度及离子强度呈正相关性, 动力学计算表明, 该条件下的光解反应是两种带同种电荷的离子之间的反应。因而, 在维生素B2液体制剂的运输、保存和使用过程中, 应注意控制体系的离子强度。