红薯也叫甜薯(sweet potato)或甘薯, 在北纬40°和南纬32°间广泛种植。目前我国是世界上最大的红薯生产国, 年产量约占世界总产量的80%[1]。在2005~2014年间, 我国共鉴定红薯品种106种[2]。广西地处亚热带, 适合红薯生长, 每年红薯栽培面积约23.33万公顷[3]。红薯叶是红薯产业中主要的副产物, 在广西每年可收获四季, 如能加工利用, 对红薯产业的发展有重大意义。
红薯叶营养丰富包含蛋白质、粗纤维以及矿物质等[4], 同时还富含多种功效成分。已报道的功效成分包括单咖啡酰奎宁酸、双咖啡酰奎宁酸、三咖啡酰奎宁酸、咖啡酸(CA)、芥子酸(SA)、槲皮素类以及类胡萝卜素等[5-8]。许多研究表明, 这些功效成分具有广泛的生物活性[9, 10]。但是目前仍没有关于红薯叶功效成分系统的研究报道。
在农副产品的开发利用中, 分析不同品种中功效物质的含量是选择优势品种的关键环节。目前针对植物中功效物质的分析方法主要有高速逆流色谱法、超临界流体色谱法、高效液相色谱法和液相色谱-质谱联用法等[11-13], 其中液相色谱-串联质谱法由于定性、定量准确, 已成为研究植物功效组分的重要分析方法。
本研究建立了一种超高效液相色谱-串联质谱(UHPLC-MS/MS)分析红薯叶中15种功效成分的方法。该方法快速、准确、前处理简单, 可快速分析红薯叶中的功效成分。本研究发现了红薯叶中3种未被报道的组分, 并通过定性定量分析系统研究10种红薯叶中的主要功效成分, 发现可供开发的潜在优势品种, 为红薯产业深度利用开发、拓展红薯产业链提供基础研究依据。
LC-30A超高效液相色谱仪(日本岛津公司); AB-4000 Q TRAP三重四极杆质谱仪(美国AB公司); KQ-800KDE超声波清洗机(昆山超声仪器有限公司); FDU-1200冷冻干燥机(日本Eyela公司); Milli-Q超纯水处理仪(美国Millipore公司); 3k-15离心机(德国西格玛公司)。
标准品:3-咖啡酰奎宁酸(绿原酸, 3-CQA)、咖啡酸、芥子酸、奎宁酸(QA)、1-咖啡酰奎宁酸(1-CQA)、4-咖啡酰奎宁酸(4-CQA)、5-咖啡酰奎宁酸(5-CQA)、3, 4-二咖啡酰奎宁酸(3, 4-DiCQA)、3, 5-二咖啡酰奎宁酸(3, 5-DiCQA)、4, 5-二咖啡酰奎宁酸(4, 5-DiCQA)、槲皮素-3-β-D-葡萄糖苷(quercetin 3-β-D-glucoside)、芦丁(rutin)、杨梅素(myricetin)和木樨草素(luteolin)均为HPLC级, 购自美国Sigma公司; 3, 4, 5-三咖啡酰奎宁酸(3, 4, 5-TrisCQA)购自成都曼思特生物科技有限公司。色谱纯甲醇、乙腈购自德国Merck公司, 其他分析纯试剂均购自国药集团化学试剂有限公司。
10个品种的红薯叶采摘自广西壮族自治区农业科学院, 采摘时间为2017年5~8月。10个品种编号、名称和颜色分别是:桂粉2号(S1, 绿色)、观赏紫秧(S2, 紫色)、桂紫薇薯1号(S3, 绿色)、心香(S4, 绿色)、万薯5号(S5, 绿色夹杂紫色)、安哥拉白心薯(S6, 绿色夹杂紫色)、桂经薯2号(S7, 绿色)、广薯87号(S8, 绿色)、越南黄心薯(S9, 绿色)和观赏黄秧(S10, 黄色)。取新鲜红薯叶, 洗净后, 于-18 ℃冷冻干燥24 h, 磨粉过40目筛, 密闭封口袋, 保存待用。
准确称取各标准品, 用甲醇溶解并配制成500 mg/L的标准储备液。准确移取0.20 mL各标准储备液, 置于10 mL容量瓶中, 用50%(v/v)甲醇水溶液定容, 配制10 mg/L各标准中间液。分别取0.2 mL各标准中间液, 用50%(v/v)甲醇水溶液稀释, 定容至10 mL, 得到质量浓度为200 μg/L的各标准工作液。
分别取0.4 mL各标准中间液, 用50%(v/v)甲醇水溶液稀释, 配制400 μg/L的混合标准溶液; 用50%(v/v)甲醇水溶液逐级稀释, 配制成质量浓度为0.1~200 μg/L的系列混合标准溶液。
准确称量1 g红薯叶冻干粉末, 加入15 mL 80%(v/v)甲醇水溶液, 超声波提取20 min后, 以10 000 r/min离心10 min, 移取上清液, 重复提取3次, 汇集上清液, 用50%(v/v)甲醇水溶液定容至50 mL, 取适量上清液, 用50%(v/v)甲醇水溶液稀释适量倍数后, 过滤, 待测。
色谱柱为Phenomenex C18柱(100 mm×2.1 mm, 1.8 μm); 柱温为30 ℃; 流动相A为0.15%(v/v)甲酸水溶液; 流动相B为乙腈; 流速为0.3 mL/min。梯度洗脱程序:0~15 min, 10%B~40%B; 15~16 min, 40%B~80%B; 16~22 min, 80%B; 22.00~22.03 min, 80%B~10%B; 22.03~27.50 min, 10%B。进样体积5 μL。
离子源:ESI源, 负离子模式; 离子源温度:550 ℃; 多反应监测(MRM)模式; 电离电压:-4.5 kV; 雾化气压力:344 kPa; 碰撞气压力:344 kPa; 气帘气压力:241 kPa。预四极杆入口电压(EP): -10 V; 碰撞室出口电压(CXP): -13 V。15种功效成分的定性、定量离子对、解簇电压(DP)和碰撞电压(CE)见表 1。
数据处理采用美国AB公司分析软件Analyst 1.6.2, 所有样本均重复测定3次, 取平均值, 结果均表达为平均值±SD。
一般而言, 如果待测化合物含有氨基, 应优先考虑使用ESI+扫描模式; 如果待测物含有强负电性基团, 如-Cl、-OH等, 需优先考虑ESI-扫描模式; 当待测物酸碱性不明显时, 两种方式都要进行尝试。本次实验待测化合物大都带有一个或多个-OH基团, 具有一定酸性, 更适合ESI-模式, 但有些中性化合物如芦丁等, 在正离子模式下的响应值会优于负离子模式下的响应值。因此实验首先采用针泵进样, 测定不同化合物在正离子和负离子模式下的质谱信号。结果显示大多数待测化合物在ESI-模式下的响应值较强, 芦丁在ESI+与ESI-模式下的响应值相差不大, 但是红薯叶提取液在ESI+扫描模式下受干扰较大。因此最终本实验采用ESI-模式分析待测化合物。
在负离子模式下, 选择出各化合物的母离子, 对其进行碰撞解离以获得二级离子碎片, 并对二级碎片离子进行碰撞能量的优化, 选择两组干扰少、响应值高的离子对作为定性离子和定量离子对, 优化后的参数见表 1。
实验过程发现, 1-CQA、3-CQA、4-CQA和5-CQA均含有m/z为353.1、191.1、179.1和135.0的离子碎片; 3, 4-DiCQA、3, 5-DiCQA和4, 5-DiCQA均含有m/z为515.2、353.1、190.1和179.1的离子碎片。采用针泵进样在MRM模式下进行优化, 发现这两组同系物无法通过选择离子来区分, 还需进一步优化色谱条件以达到分离要求。
考察了甲醇-水和乙腈-水两种不同流动相体系对待测物分离效果的影响, 结果显示, 大多数待测化合物在乙腈-水体系下峰形更为尖锐、清晰。实验还发现酚酸类物质在乙腈-水体系和甲醇-水体系下色谱峰均有拖尾现象, 尤其是双咖啡酰奎宁酸类和三咖啡酰奎宁酸, 拖尾较为严重。尝试在乙腈-水体系中加入体积分数分别为0.05%、0.1%、0.15%和0.2%的甲酸, 结果显示, 在乙腈-0.15%(v/v)甲酸水和乙腈-0.2%(v/v)甲酸水两种流动相条件下, 各化合物的峰形清晰, 基本无拖尾现象。考虑到在负离子模式下, 过高的酸性环境可能对化合物的电离产生抑制效应, 因此最终采用乙腈-0.15%(v/v)甲酸水溶液作为流动相。
在乙腈-0.15%(v/v)甲酸水流动相体系下对100 μg/L的混合标准溶液进行分析,其总离子流图色谱谱见图 1。由图 1可知, 在本研究的色谱分离体系下, 4种单咖啡酰奎宁酸同系物和3种双咖啡酰奎宁酸同系物均能得到良好分离。
图 2为典型红薯叶样品(S9)的总离子流色谱图。与图 1对比可知, S9样品中含有11种已知的功效物质, 分别为QA、5-CQA、3-CQA、4-CQA、CA、芦丁、槲皮素-3-β-D-葡萄糖苷、3, 4-DiCQA、3, 5-DiCQA、4, 5-DiCQA和3, 4, 5-TrisCQA, 同时还含有未知化合物1(8.15 min)和未知化合物2(12.80 min)。
针对这两个未知化合物, 进一步采用多反应监测-条件判断-增强离子扫描(MRM-IDA-EPI)模式扫描其二级子离子。MRM-IDA-EPI是三重四极杆质谱仪一种特有的扫描方式, 其实现方法为对某一组离子对在MRM模式下的响应值进行条件判断, 当采集强度超过预设值后, 将触发EPI模式, 从而获得二级扫描图谱。本实验对191.1/353.1和300.1/463.2两组离子对进行MRM-IDA-EPI扫描。在m/z 50~800的扫描范围内, 未知化合物1和未知化合物2的二级质谱图分别见图 3a和图 3b。
未知化合物1母离子的m/z为353.1, 子离子的m/z分别为135.1、179.1和191.1, 均为单咖啡酰奎宁酸的典型分子离子, 由于该化合物与4种单咖啡酰奎宁酸的出峰时间均不相同, 推断其可能为单咖啡酰奎宁酸的同分异构体。
未知化合物2的质谱图与槲皮素-3-β-D-葡萄糖苷类似, 母离子的m/z为463.2, 子离子具有槲皮素典型分子离子碎片(m/z为300.1和179.0), 而且该物质与槲皮素-3-β-D-葡萄糖苷出峰时间十分接近。实验中尝试通过改变流动相体系及流动相比例来分离这两种物质, 结果发现不论如何改变均无法分离这两个物质(见图 4)。因此推测未知化合物2为槲皮素-3-β-D-葡萄糖苷的异构体, 可能为槲皮素-3-α-D-葡萄糖苷。
采用1.4节的分析条件, 考察15种功效成分的线性关系、检出限、回收率以及相对标准偏差(见表 2)。由表 2可知, 15种功效成分在各自的范围内线性关系良好, 相关系数(r)为0.999 5~0.999 8, 方法的检出限为0.13~0.64 μg/L。
以S9样品为研究对象, 针对可检测出的组分, 根据计算值, 分别加入测定含量50%、80%、100%水平的化合物; 对未检测出的组分, 按空白加标方法加入不同水平的标准物质, 使其质量浓度分别为5、10和20 μg/L。按1.3节和1.4节方法操作, 测定平均回收率和精密度, 结果见表 2。可以看出, 除咖啡酸的回收率明显偏高(131.4%)外, 其余各化合物的回收率(82.2%~104.2%)均在合理范围内。
利用本方法测定10个品种红薯叶(S1~S10)中的功效成分, 测定结果见表 3。由表 3可知, 不同品种红薯叶中各组分含量差异巨大, 15种功效成分中, 1-咖啡酰奎宁酸、杨梅素、木樨草素和芥子酸在所有样品中均未检出, 芦丁在部分样品中有检出。咖啡酰奎宁类物质是红薯叶中的主要成分, 占所测功效成分的35.1%~84.2%,其中3, 5-二咖啡酰奎宁酸在不同红薯叶品种中含量最高,为122.1~1 080.3 mg/100g。相比咖啡酰奎宁类物质, 黄酮类物质在红薯叶中含量不高, 仅占所测功效成分的0.4%~6.9%。
本文建立了一种快速、高效分析红薯叶功效物质的超高效液相色谱-串联质谱分析方法。应用本方法分析10个不同品种的红薯叶, 确定了红薯叶富含的多酚类物质, 其中咖啡奎宁酸类物质是红薯叶中的主要功效成分。对大多数品种而言, 3, 5-二咖啡酰奎宁酸和奎宁酸是红薯叶中含量最高的两种酚类物质。本方法的建立为红薯叶的开发利用及深度研究提供了技术支撑。